| 缩略词表 | 第5-7页 |
| 摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 1. 综述 | 第13-49页 |
| 1.1 雷公藤内酯醇 | 第13-28页 |
| 1.2 Tab1/Tak1参与的Toll-Like Receptor信号通路 | 第28-36页 |
| 1.3 小分子与蛋白质靶分子相互作用分析方法 | 第36-42页 |
| 参考文献 | 第42-49页 |
| 2. 实验方法与材料 | 第49-74页 |
| 2.1 试剂和器材 | 第49-50页 |
| 2.1.1 试剂 | 第49页 |
| 2.1.2 器材与仪器 | 第49-50页 |
| 2.2 实验方法 | 第50-73页 |
| 2.2.1 TP单克隆抗体的制备与鉴定 | 第50-53页 |
| 2.2.2 TP的荧光标记与鉴定 | 第53页 |
| 2.2.3 TP分子靶点的鉴定 | 第53-58页 |
| 2.2.4 TP与Tab1蛋白体外结合实验 | 第58-67页 |
| 2.2.5 TP抑制巨噬细胞活化 | 第67-70页 |
| 2.2.6 TP抑制巨噬细胞活化的动物模型 | 第70-73页 |
| 2.3 数据分析 | 第73-74页 |
| 3. 实验结果 | 第74-103页 |
| 3.1 TP单克隆抗体的制备与鉴定 | 第74-76页 |
| 3.1.1 mTP的制备与鉴定 | 第74页 |
| 3.1.2 TP人工抗原的鉴定与偶联率 | 第74页 |
| 3.1.3 多抗血清的鉴定 | 第74-75页 |
| 3.1.4 单克隆抗体的制备与鉴定 | 第75-76页 |
| 3.2 TP的荧光标记及生物活性测定 | 第76-78页 |
| 3.3 TP分子靶点的鉴定 | 第78-81页 |
| 3.3.1 TP结合蛋白的鉴定 | 第78-80页 |
| 3.3.2 TP与Tab1在胞内结合的鉴定 | 第80-81页 |
| 3.4 TP与Tab1蛋白体外结合的研究 | 第81-90页 |
| 3.4.1 分子对接分析 | 第81-82页 |
| 3.4.2 Tab1的体外表达与纯化 | 第82-83页 |
| 3.4.3 紫外光谱法分析 | 第83-84页 |
| 3.4.4 同步荧光光谱法分析 | 第84-85页 |
| 3.4.5 平衡透析法分析 | 第85-87页 |
| 3.4.6 TP-mmc与Tab1-his结合的体外研究 | 第87页 |
| 3.4.7 其他方法检测Tab1-his与TP的结合 | 第87-89页 |
| 3.4.8 截短突变研究Tab1与TP的结合 | 第89-90页 |
| 3.5 TP抑制巨噬细胞活化的分子机制 | 第90-97页 |
| 3.5.1 TP抑制巨噬细胞的活化 | 第90-93页 |
| 3.5.2 TP通过结合Tab1调控巨噬细胞活化的分子机制 | 第93-97页 |
| 3.6 小鼠体内验证TP调控巨噬细胞活化的分子机制 | 第97-103页 |
| 3.6.1 TP抑制小鼠巨噬细胞的活化 | 第98-100页 |
| 3.6.2 TP通过结合Tab1调控巨噬细胞活化的分子机制 | 第100-103页 |
| 4. 讨论 | 第103-106页 |
| 参考文献 | 第106-108页 |
| 附录 | 第108-109页 |
| 致谢 | 第109-110页 |
