| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-33页 |
| 1 十字花科作物根肿病 | 第12-15页 |
| 1.1 发生与危害 | 第12-13页 |
| 1.2 病害症状 | 第13-15页 |
| 2 根肿病病原学研究 | 第15-21页 |
| 2.1 寄主范围 | 第15-16页 |
| 2.2 病原菌的形态特征 | 第16页 |
| 2.3 分类地位 | 第16-17页 |
| 2.4 病原菌生活史 | 第17-19页 |
| 2.5 病原菌生物学特性 | 第19页 |
| 2.6 病原菌生理小种 | 第19-20页 |
| 2.7 病菌侵染对寄主代谢的影响 | 第20-21页 |
| 3 芸薹根肿菌检测方法 | 第21-28页 |
| 3.1 诱饵种植 | 第22页 |
| 3.2 显微镜观察 | 第22-23页 |
| 3.3 血清学检测 | 第23-24页 |
| 3.4 分子生物学检测技术 | 第24-27页 |
| 3.5 近红外光谱学检测的原理及应用 | 第27-28页 |
| 4 根肿病的防治 | 第28-32页 |
| 4.1 农业措施 | 第28-29页 |
| 4.2 化学防治 | 第29页 |
| 4.3 抗病品种 | 第29-30页 |
| 4.4 生物防治 | 第30-31页 |
| 4.5 喜树碱抑菌机理的研究发展 | 第31-32页 |
| 5 研究的目的与意义 | 第32-33页 |
| 第二章 芸薹根肿菌侵染寄主的早期检测 | 第33-58页 |
| 1 材料与方法 | 第33-44页 |
| 1.1 供试病样及盆栽接菌幼苗 | 第33-35页 |
| 1.2 试剂及主要仪器 | 第35-36页 |
| 1.2.1 试剂 | 第35-36页 |
| 1.2.2 仪器设备 | 第36页 |
| 1.3 检测方法 | 第36-44页 |
| 1.3.1 光学显微镜观察 | 第36-39页 |
| 1.3.2 常规PCR检测 | 第39-41页 |
| 1.3.3 常规PCR检测灵敏度的测试 | 第41-43页 |
| 1.3.4 巢式PCR和实时荧光定量PCR检测 | 第43-44页 |
| 2 结果与分析 | 第44-56页 |
| 2.1 光学显微镜观察 | 第44-47页 |
| 2.1.1 根肿标样制片显微观察 | 第44-45页 |
| 2.1.2 感病幼苗显微观察 | 第45-47页 |
| 2.1.3 根肿菌休眠孢子显微观察 | 第47页 |
| 2.2 常规PCR检测方法 | 第47-51页 |
| 2.3 盆栽接种感病幼苗检测 | 第51-53页 |
| 2.4 病田土壤根肿菌检测 | 第53-54页 |
| 2.5 巢式PCR和实时荧光定量PCR检测 | 第54-56页 |
| 2.5.1 巢式PCR检测 | 第54-55页 |
| 2.5.2 实时荧光定量PCR检测 | 第55-56页 |
| 3 小结与讨论 | 第56-58页 |
| 第三章 近红外光谱检测体系的建立 | 第58-78页 |
| 1 材料与方法 | 第58-63页 |
| 1.1 供测材料 | 第58-59页 |
| 1.2 仪器设备 | 第59页 |
| 1.3 检测方法 | 第59-63页 |
| 1.3.1 材料预处理 | 第60页 |
| 1.3.2 样品近红外光谱收集与校正 | 第60-61页 |
| 1.3.3 导光谱和主要成分分析方法 | 第61页 |
| 1.3.4 支持向量机对样品特征的提取 | 第61-63页 |
| 1.3.5 样本检测评估标准和软件 | 第63页 |
| 2 结果与分析 | 第63-77页 |
| 2.1 根、叶组织近红外光谱特性 | 第64-68页 |
| 2.1.1 根组织样品近红外光谱特征 | 第64-66页 |
| 2.1.2 叶组织近红外光谱特征 | 第66-68页 |
| 2.2 根、叶组织主要成分特征分析 | 第68-72页 |
| 2.2.1 根组织PCA特征 | 第68-70页 |
| 2.2.2 叶组织PCA特征 | 第70-72页 |
| 2.3 支持向量机对根肿病的检测分析 | 第72-77页 |
| 2.3.1 基于根组织样品光谱特征的检测 | 第72-74页 |
| 2.3.2 基于叶组织样品光谱特征的检测 | 第74-77页 |
| 3 小结与讨论 | 第77-78页 |
| 第四章 喜树碱对Aaa RS-2 菌株抑菌机理研究 | 第78-97页 |
| 1 材料与方法 | 第79-85页 |
| 1.1 供试菌株 | 第79页 |
| 1.2 试剂及仪器 | 第79-80页 |
| 1.3 试验方法 | 第80-85页 |
| 1.3.1 CPT对Aaa RS-2 菌株的抑菌活性测定 | 第80-81页 |
| 1.3.2 CTP对Aaa RS-2 菌株的游动性测定 | 第81页 |
| 1.3.3 CPT对Aaa RS-2 菌株活/死细胞染色 | 第81页 |
| 1.3.4 CPT处理菌株经超薄切片电镜观察 | 第81-82页 |
| 1.3.5 CPT处理菌株hcp蛋白分泌的血清学检测 | 第82-83页 |
| 1.3.6 RNA提取和实时荧光定量PCR检测 | 第83-85页 |
| 1.3.7 数据分析 | 第85页 |
| 2 结果与分析 | 第85-95页 |
| 2.1 CPT对Aaa RS-2 菌株的抑菌活性的影响 | 第85-88页 |
| 2.1.1 不同浓度CPT的抑菌活性 | 第85-86页 |
| 2.1.2 CPT对不同培养时间菌体的抑菌活性 | 第86-87页 |
| 2.1.3 不同pH值CPT的抑菌活性 | 第87-88页 |
| 2.2 CPT对Aaa RS-2 菌株的游动性的影响 | 第88-89页 |
| 2.3 CPT对Aaa RS-2 菌株活/死细胞染色 | 第89-90页 |
| 2.4 CPT处理Aaa RS-2 菌株超薄切片电镜观察 | 第90-91页 |
| 2.5 Aaa RS-2 菌株经CPT处理血清学检测 | 第91-93页 |
| 2.6 Aaa RS-2 菌株对CPT效应差异基因表达检测 | 第93-95页 |
| 3 小结与讨论 | 第95-97页 |
| 第五章 结论与展望 | 第97-100页 |
| 1 结论 | 第97-98页 |
| 2 创新点 | 第98页 |
| 3 展望 | 第98-100页 |
| 参考文献 | 第100-112页 |
| 附录 攻读博士学位期间发表论文 | 第112-113页 |
| 致谢 | 第113-114页 |
