摘要 | 第8-10页 |
ABSTRACT | 第10-12页 |
第1章 文献综述 | 第13-27页 |
1.1 SDR超家族基因的一般结构 | 第13-14页 |
1.2 SDR超超家族基因的分类 | 第14-16页 |
1.3 SDR超家族基因的历史背景以及进化 | 第16-18页 |
1.4 SDR超家族基因功能 | 第18-22页 |
1.4.1 羟基类固醇脱氢酶(HSDs) | 第18-20页 |
1.4.2 视黄醇脱氢酶(RDHs) | 第20-21页 |
1.4.3 其他类型的SDR | 第21-22页 |
1.5 SDR超家族基因在鱼类中的研究状况 | 第22-23页 |
1.6 关键科学问题的提出和本研究的目的意义 | 第23-27页 |
第2章 尼罗罗非鱼SDR超家族成员的分离及生物信息学分析 | 第27-57页 |
2.1 前言 | 第27-28页 |
2.2 实验材料与方法 | 第28-36页 |
2.2.1 实验动物 | 第28页 |
2.2.2 尼罗罗非鱼SDR超家族成员的鉴定 | 第28-29页 |
2.2.3 SDR超家族的系统发育分析以及基因定位 | 第29-32页 |
2.2.4 SDR在尼罗罗非鱼中的时空表达模式分析 | 第32-33页 |
2.2.5 SDR基因表达模式的验证 | 第33-36页 |
2.3 实验结果 | 第36-52页 |
2.3.1 尼罗罗非鱼及其他鱼类中SDR超家族基因的分离鉴定 | 第36-37页 |
2.3.2 SDR基因的家族分类及系统进化分析 | 第37-41页 |
2.3.3 SDR超家族的共线性分析及基因的串联型复制。 | 第41-44页 |
2.3.4 SDR在尼罗罗非鱼成鱼8个组织中的表达模式分析 | 第44-45页 |
2.3.5 SDR在尼罗罗非鱼不同发育时期性腺转录组的表达模式分析 | 第45-50页 |
2.3.6 SDR表达模式的验证 | 第50-52页 |
2.4 讨论 | 第52-57页 |
2.4.1 SDR成员的分离、分类及系统发生分析 | 第52-53页 |
2.4.2 SDR基因在8个成鱼组织中的表达及其意义 | 第53-54页 |
2.4.3 SDR基因在不同发育时期性腺中的表达及其意义 | 第54-55页 |
2.4.4 转录组中SDR基因表达模式的实验验证 | 第55-57页 |
第3章 尼罗罗非鱼hsd3βs功能的初步研究 | 第57-71页 |
3.1 前言 | 第57-58页 |
3.2 实验材料和仪器 | 第58-64页 |
3.2.1 实验动物 | 第58页 |
3.2.2 实验试剂和仪器 | 第58页 |
3.2.3 有关试剂的配制 | 第58-61页 |
3.2.4 实验方法 | 第61-64页 |
3.3 结果 | 第64-69页 |
3.3.1 敲除序列的选择以及突变检测 | 第64-66页 |
3.3.2 hsd3β1 突变检测 | 第66-69页 |
3.4 讨论 | 第69-71页 |
第4章 结论 | 第71-73页 |
参考文献 | 第73-83页 |
致谢 | 第83-85页 |
在读期间发表论文情况 | 第85页 |
在读期间参与科研情况 | 第85页 |