| 英文缩略词 | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-12页 |
| Abstract | 第12-15页 |
| 前言 | 第16-18页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-46页 |
| 第一节 神经细胞凋亡机制及主要损伤模型的研究概况 | 第18-32页 |
| 1. 神经细胞凋亡特征及检测 | 第18-19页 |
| 2 导致神经细胞凋亡的主要神经病理过程 | 第19-21页 |
| 3. 神经细胞凋亡主要途径 | 第21-22页 |
| 4. 常见蛋白基因与神经细胞凋亡 | 第22-24页 |
| 5. 常用神经细胞凋亡的损伤模型 | 第24-26页 |
| 参考文献 | 第26-32页 |
| 第二节 木豆叶化学成分及药理活性研究进展 | 第32-45页 |
| 1. 木豆叶的化学成分研究 | 第32-33页 |
| 2. 木豆的药理活性研究 | 第33-38页 |
| 3. 应用 | 第38-39页 |
| 4. 结论 | 第39页 |
| 参考文献 | 第39-45页 |
| 第三节 立题依据和研究意义 | 第45-46页 |
| 第二章 木豆叶不同部位的制备及神经细胞保护活性筛选 | 第46-54页 |
| 第一节 木豆叶的提取及其不同部位的制备 | 第46-48页 |
| 1. 仪器和试剂 | 第46-47页 |
| 2. 提取方法及提取流程图 | 第47-48页 |
| 第二节 不同部位抗皮质酮诱导PC12细胞损伤保护作用筛选 | 第48-52页 |
| 1. 试剂与仪器 | 第48页 |
| 2. 细胞的复苏与传代 | 第48-49页 |
| 3. 细胞的计数 | 第49页 |
| 4. 供试样品溶液的配制 | 第49-50页 |
| 5. 不同部位对皮质酮诱导PC12细胞损伤保护活性的筛选 | 第50页 |
| 6. 数据处理 | 第50页 |
| 7. 实验结果 | 第50-52页 |
| 8. 小结 | 第52页 |
| 参考文献 | 第52-54页 |
| 第三章 木豆叶乙醇提取物主要化学成分分离及UPLC-QTof-MS定性分析 | 第54-79页 |
| 第一节 木豆叶乙醇提取物主要化学成分的分离 | 第54-58页 |
| 1. 仪器和试剂 | 第54页 |
| 2. 主要化学成分的分离 | 第54-58页 |
| 第二节 分离化合物的结构鉴定 | 第58-64页 |
| 1. 仪器和试剂 | 第58页 |
| 2. 化合物结构鉴定结果 | 第58-60页 |
| 3. 化合物光谱数据 | 第60-64页 |
| 第三节 木豆叶乙醇提取物主要成分UPLC-QTof-MS定性鉴别 | 第64-77页 |
| 1. 仪器与试剂 | 第64页 |
| 2. 实验方法 | 第64-65页 |
| 3. 实验结果 | 第65-77页 |
| 4. 小结 | 第77页 |
| 参考文献 | 第77-79页 |
| 第四章 木豆叶主要化学成分的神经细胞保护活性筛选 | 第79-105页 |
| 第一节 三种细胞损伤模型的建立 | 第79-83页 |
| 1. 试剂与仪器 | 第79-80页 |
| 2. 供试样品溶液的配制 | 第80页 |
| 3. 细胞损伤模型的建立方法 | 第80-81页 |
| 4. 数据的处理 | 第81页 |
| 5. 实验结果 | 第81-82页 |
| 6. 小结 | 第82-83页 |
| 第二节 木豆叶中主要化合物细胞保护活性筛选 | 第83-91页 |
| 1. 试剂与仪器 | 第83页 |
| 2. 筛选样品 | 第83页 |
| 3. 供试样品溶液的配制 | 第83-84页 |
| 4. 三种模型的活性筛选方法 | 第84-85页 |
| 5. 数据处理 | 第85页 |
| 6. 三种模型筛选的结果 | 第85-89页 |
| 7. 小结 | 第89-91页 |
| 第三节 四个木豆茋类化合物抗氧化活性的体外评价 | 第91-103页 |
| 1. 试剂与仪器 | 第91页 |
| 2. 化学法评价抗氧化活性 | 第91-95页 |
| 3. 生物学法评价抗氧化活性 | 第95-96页 |
| 4. 数据处理 | 第96页 |
| 5. 实验结果 | 第96-102页 |
| 6. 小结 | 第102-103页 |
| 第四节 总结与讨论 | 第103-104页 |
| 参考文献 | 第104-105页 |
| 第五章 木豆素C抗谷氨酸诱导PC12细胞损伤保护及其作用机制研究 | 第105-133页 |
| 第一节 Longistylin C抗谷氨酸诱导PC12细胞凋亡的活性研究 | 第105-113页 |
| 1. 试剂与仪器 | 第105页 |
| 2. 实验方法 | 第105-108页 |
| 3. 实验结果 | 第108-111页 |
| 4. 小结 | 第111-113页 |
| 第二节 Longistylin C通过调节NMDAR/2B-ERK1/2信号通路抗谷氨酸诱导PC12细胞凋亡 | 第113-120页 |
| 1. 试剂与仪器 | 第113页 |
| 2. 实验方法 | 第113-116页 |
| 3. 实验结果 | 第116-119页 |
| 4. 小结 | 第119-120页 |
| 第三节 Longistylin C通过抑制线粒体通路抗谷氨酸诱导PC12细胞凋亡 | 第120-126页 |
| 1. 试剂与仪器 | 第120页 |
| 2. 实验方法 | 第120-122页 |
| 3. 实验结果 | 第122-125页 |
| 4. 小结 | 第125-126页 |
| 第四节 Longistylin C抑制内质网通路抗谷氨酸诱导PC12细胞凋亡 | 第126-129页 |
| 1. 试剂与仪器 | 第126页 |
| 2. 实验方法 | 第126页 |
| 3. 实验结果 | 第126-128页 |
| 4. 小结 | 第128-129页 |
| 第五节 总结与讨论 | 第129-131页 |
| 参考文献 | 第131-133页 |
| 第六章 木豆素抗皮质酮诱导PC12细胞凋亡活性及其作用机制研究 | 第133-156页 |
| 第一节 木豆素抗皮质酮诱导PC12细胞凋亡的活性研究 | 第133-139页 |
| 1. 试剂与仪器 | 第133页 |
| 2. 实验方法 | 第133-134页 |
| 3. 实验结果 | 第134-138页 |
| 4. 小结 | 第138-139页 |
| 第二节 CSA通过缓解氧化应激抗皮质酮诱导损伤PC12细胞凋亡 | 第139-142页 |
| 1. 试剂与仪器 | 第139页 |
| 2. 实验方法 | 第139-140页 |
| 3. 实验结果 | 第140-141页 |
| 4. 小结 | 第141-142页 |
| 第三节 CSA通过调节内质网应激抗皮质酮诱导PC12细胞凋亡 | 第142-146页 |
| 1. 试剂与仪器 | 第142页 |
| 2. 实验方法 | 第142-143页 |
| 3. 实验结果 | 第143-145页 |
| 4. 小结 | 第145-146页 |
| 第四节 CSA通过调节雌激素受体通路抗皮质酮诱导损伤PC12细胞凋亡 | 第146-152页 |
| 1. 试剂与仪器 | 第146页 |
| 2. 实验方法 | 第146-147页 |
| 3. 结果 | 第147-151页 |
| 4. 小结 | 第151-152页 |
| 第五节 总结与讨论 | 第152-154页 |
| 参考文献 | 第154-156页 |
| 总结与讨论 | 第156-161页 |
| 致谢 | 第161-162页 |
| 个人简历 | 第162-165页 |
| 附图 | 第165-185页 |
