| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略词表 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 第一章 小分子化合物Fc99降低单核/巨噬细胞Tenascin-C表达 | 第16-36页 |
| 1.1 引言 | 第16页 |
| 1.2 实验材料 | 第16-17页 |
| 1.2.1 细胞培养 | 第16-17页 |
| 1.2.2 主要试剂 | 第17页 |
| 1.2.3 主要仪器和设备 | 第17页 |
| 1.3 实验方法 | 第17-25页 |
| 1.3.1 检测THP-1细胞系PMA处理之后CD14和CDllb的表达 | 第17-18页 |
| 1.3.2 检测不同TLR配体处理THP-1巨噬细胞TN-C表达 | 第18-19页 |
| 1.3.3 CCk8法小分子化合物Fc99对THP-1巨噬细胞活力实验 | 第19-20页 |
| 1.3.4 检测Fc99处理对LPS诱导的THP-1巨噬细胞表达TN-C的影响 | 第20-21页 |
| 1.3.5 LPS诱导RAW264.7巨噬细胞中TN-C mRNA和蛋白水平升高 | 第21-22页 |
| 1.3.6 Fc99降低LPS刺激的RAW264.7细胞TN-C的表达 | 第22-23页 |
| 1.3.7 CCK8检测ActinomycinD对RAW264.7细胞活力的影响 | 第23页 |
| 1.3.8 acD处理RAW264.7细胞不同时间,检测Fc99是否直接影响TN-CmRNA的稳定性 | 第23页 |
| 1.3.9 WB检测Fc99处理转染TN-C质粒的293T细胞中TN-C的表达 | 第23-25页 |
| 1.3.10 数据统计分析 | 第25页 |
| 1.4 实验结果与分析 | 第25-33页 |
| 1.4.1 THP-1巨噬细胞诱导结果 | 第25-26页 |
| 1.4.2 TLR配体诱导THP-1巨噬细胞TN-C高表达 | 第26-27页 |
| 1.4.3 Fc99对THP-1巨噬细胞细胞活力的影响 | 第27-28页 |
| 1.4.4 Fc99抑制THP-1巨噬细胞中TN-C的表达 | 第28-29页 |
| 1.4.5 Fc99抑制RAW264.7小鼠巨噬细胞TN-C表达 | 第29-30页 |
| 1.4.6 Fc99抑制人外周血PBMC诱导的巨嗟细胞表达TN-C | 第30-31页 |
| 1.4.7 Fc99不影响TN-C mRNA的稳定性 | 第31-32页 |
| 1.4.8 Fc99降低转染TN-C质粒的293T细胞中TN-C蛋白的表达 | 第32-33页 |
| 1.5 讨论 | 第33-36页 |
| 第二章 Fc99缓解小鼠关节炎的发病进程 | 第36-41页 |
| 2.1 引言 | 第36页 |
| 2.2 实验材料 | 第36页 |
| 2.2.1 实验对象 | 第36页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第36页 |
| 2.2.3 主要仪器设备 | 第36页 |
| 2.3 实验方法 | 第36-37页 |
| 2.3.1 Zymosan诱导的小鼠关节炎模型 | 第36-37页 |
| 2.3.2 数据统计分析 | 第37页 |
| 2.4 实验结果与分析 | 第37-39页 |
| 2.4.1 Fc99缓解ZIA模型小鼠的关节炎症状 | 第37-38页 |
| 2.4.2 Fc99降低关节组织TN-C mRNA的表达 | 第38-39页 |
| 2.5 讨论 | 第39-41页 |
| 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-46页 |
| 综述 | 第46-51页 |
| 参考文献 | 第49-51页 |
| 附录 | 第51-55页 |
| 硕士期间科研成果 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
