| 摘要 | 第1-18页 |
| ABSTRACT | 第18-23页 |
| 缩略词表 | 第23-24页 |
| 第一章 研究背景 | 第24-60页 |
| 第一节 川产道地药材免疫调节作用的研究进展 | 第24-32页 |
| 1 川牛膝的免疫调节作用 | 第24-25页 |
| ·对体液免疫的影响 | 第24页 |
| ·对细胞免疫的影响 | 第24-25页 |
| ·对红细胞免疫的影响 | 第25页 |
| ·对机体免疫低下的保护作用 | 第25页 |
| 2 杜仲的免疫调节作用 | 第25-26页 |
| ·对体液免疫的影响 | 第25-26页 |
| ·对细胞免疫的影响 | 第26页 |
| ·对免疫器官的影响 | 第26页 |
| 3 川明参的免疫调节作用 | 第26-27页 |
| ·对体液免疫的影响 | 第26-27页 |
| ·对细胞免疫的影响 | 第27页 |
| 4 川麦冬免疫调节作用 | 第27-28页 |
| ·对细胞免疫的影响 | 第27页 |
| ·对免疫器官的影响 | 第27页 |
| ·对免疫低下的保护作用 | 第27-28页 |
| ·对过敏反应的影响 | 第28页 |
| 5 川续断免疫调节作用 | 第28-29页 |
| ·对细胞免疫的影响 | 第28页 |
| ·对免疫低下的保护作用 | 第28-29页 |
| 6 丹参的免疫调节作用 | 第29-30页 |
| ·对细胞免疫的影响 | 第29页 |
| ·对红细胞免疫的影响 | 第29页 |
| ·对免疫器官的影响 | 第29页 |
| ·对细胞因子的影响 | 第29-30页 |
| ·对机体免疫低下的保护作用 | 第30页 |
| 7 川泽泻的免疫调作用 | 第30页 |
| 8 川芎的免疫调节作用 | 第30-31页 |
| 9 川白芷免疫调节作用 | 第31页 |
| 10 川佛手的免疫调节作用 | 第31-32页 |
| 第二节 中药多糖免疫调节作用的研究进展 | 第32-41页 |
| 1 中药多糖的免疫调节作用 | 第32-36页 |
| ·对体液免疫的影响 | 第32页 |
| ·对细胞免疫的影响 | 第32-33页 |
| ·对细胞因子的影响 | 第33-34页 |
| ·对红细胞免疫的影响 | 第34-35页 |
| ·对细胞毒淋巴细胞(NK,CTL)杀伤活性的影响 | 第35页 |
| ·对单核吞噬细胞系统的影响 | 第35-36页 |
| 2 中药多糖免疫调节作用的途径 | 第36-41页 |
| ·通过促进树突细胞成熟和迁移途径激活机体免疫反应 | 第36-39页 |
| ·树突细胞的来源及其在免疫反应中的作用 | 第36-37页 |
| ·树突细胞的迁移在免疫反应中的作用 | 第37-38页 |
| ·树突细胞的成熟在免疫反应中的作用 | 第38-39页 |
| ·通过Toll样受体通路激活免疫反应 | 第39-40页 |
| ·Toll样受体在机体免疫反应中的作用 | 第39页 |
| ·免疫增强剂对Toll样受体的调节 | 第39-40页 |
| ·通过CD4~+CD25~+Foxp3~+调节性T细胞发挥调节作用 | 第40-41页 |
| ·调节性Treg细胞在机体免疫反应中的作用 | 第40页 |
| ·免疫增强剂对Treg细胞的调节作用 | 第40-41页 |
| 第三节 中药川牛膝的研究进展 | 第41-46页 |
| 1 川牛膝的本草考证 | 第41-42页 |
| 2 栽培、加工炮制与品质研究 | 第42-43页 |
| 3 药理作用 | 第43-46页 |
| ·对血液循环系统的影响 | 第43页 |
| ·对机体免疫功能的影响 | 第43-44页 |
| ·对泌尿生殖系统的影响 | 第44-45页 |
| ·抗肿瘤作用 | 第45页 |
| ·抗病毒作用 | 第45页 |
| ·抗衰老作用 | 第45页 |
| ·抗炎作用 | 第45-46页 |
| ·补益作用 | 第46页 |
| 4 临床应用概况 | 第46页 |
| 第四节 立题依据、研究内容、技术路线与方法 | 第46-49页 |
| 1 立题依据 | 第46-47页 |
| 2 研究内容、技术路线与方法 | 第47-49页 |
| ·研究内容 | 第47-48页 |
| ·技术路线 | 第48-49页 |
| ·方法 | 第49页 |
| 参考文献 | 第49-60页 |
| 第二章 十种川产道地药材水提物对小鼠注射卵清白蛋白(OVA)免疫反应的影响 | 第60-67页 |
| 1 材料 | 第60-62页 |
| ·主要试剂 | 第60-62页 |
| ·试验用中药 | 第60页 |
| ·免疫试剂 | 第60页 |
| ·ELISA主要试剂 | 第60-62页 |
| ·主要仪器 | 第62页 |
| ·试验动物 | 第62页 |
| 2 方法 | 第62-65页 |
| ·中药水提物的制备 | 第62页 |
| ·动物分组和免疫程序 | 第62-63页 |
| ·血样采集 | 第63-64页 |
| ·OVA特异性IgG水平的检测 | 第64页 |
| ·OVA特异性IgG亚类水平的检测 | 第64-65页 |
| ·统计学分析 | 第65页 |
| 3 结果 | 第65-66页 |
| ·十种中药水提物对血清中OVA特异性IgG抗体水平的影响 | 第65页 |
| ·三种中药水提物对血清中OVA特异性抗体亚类IgG1、IgG2a、IgG2b水平的影响 | 第65-66页 |
| 4 讨论 | 第66页 |
| 5 小结 | 第66-67页 |
| 第三章 不同剂量川牛膝水提物对小鼠注射卵清白蛋白(OVA)免疫反应的影响 | 第67-78页 |
| 1 材料 | 第67-68页 |
| ·主要试剂 | 第67-68页 |
| ·动物免疫试剂 | 第67页 |
| ·中药 | 第67页 |
| ·ELISA所用试剂 | 第67页 |
| ·T淋巴细胞增殖所用试剂 | 第67-68页 |
| ·细胞因子检测所用试剂 | 第68页 |
| ·主要仪器 | 第68页 |
| ·试验动物 | 第68页 |
| 2 方法 | 第68-71页 |
| ·川牛膝水提物的制备 | 第68页 |
| ·动物分组和免疫程序 | 第68-69页 |
| ·血样采集 | 第69页 |
| ·内毒素检测 | 第69页 |
| ·OVA特异性IgG水平的检测 | 第69页 |
| ·OVA特异性抗体亚类(IgG1、IgG2a和IgG2b)水平的检测 | 第69页 |
| ·T淋巴细胞增殖能力检测 | 第69-70页 |
| ·淋巴细胞培养上清液中细胞因子浓度的检测 | 第70-71页 |
| ·统计学分析 | 第71页 |
| 3 结果 | 第71-75页 |
| ·RC对血清OVA特异性IgG抗体水平的影响 | 第71-72页 |
| ·RC对血清OVA特异性抗体亚类IgG1,IgG2a,IgG2b水平的影响 | 第72页 |
| ·RC对T淋巴细胞增殖能力的影响 | 第72-73页 |
| ·RC对脾淋巴细胞培养上清液中IL-4和IFN-γ含量的影响 | 第73-74页 |
| ·RC对小鼠体重的影响 | 第74-75页 |
| 4 讨论 | 第75-76页 |
| ·RC对OVA受免小鼠体液免疫反应的影响 | 第75页 |
| ·RC对OVA受免小鼠细胞因子的影响 | 第75-76页 |
| ·RC对OVA受免小鼠细胞免疫反应的影响 | 第76页 |
| ·RC对小鼠的安全性 | 第76页 |
| 5 小结 | 第76页 |
| 参考文献 | 第76-78页 |
| 第四章 川牛膝多糖体外免疫活性研究 | 第78-90页 |
| 1 材料 | 第78-80页 |
| ·主要试剂与药品 | 第78-80页 |
| ·川牛膝多糖 | 第78页 |
| ·测定淋巴细胞最大安全浓度所用试剂 | 第78-79页 |
| ·淋巴细胞增殖所用试剂 | 第79页 |
| ·细胞因子检测所用试剂 | 第79页 |
| ·NK细胞杀伤试验染色主要试剂 | 第79-80页 |
| ·主要仪器 | 第80页 |
| ·试验动物 | 第80页 |
| 2 方法 | 第80-84页 |
| ·对脾淋巴细胞最大安全浓度测定 | 第80页 |
| ·淋巴细胞增殖能力检测 | 第80-81页 |
| ·脾淋巴细胞培养上清液中细胞因子浓度的检测 | 第81-82页 |
| ·NK细胞杀伤活力检测 | 第82-84页 |
| ·效应细胞的制备 | 第82页 |
| ·K562细胞的复苏及培养 | 第82页 |
| ·细胞的传代与培养 | 第82-83页 |
| ·细胞计数和细胞活力 | 第83页 |
| ·靶细胞(K562)染色 | 第83页 |
| ·NK细胞杀伤活力检测 | 第83-84页 |
| ·统计学分析 | 第84页 |
| 3 结果 | 第84-87页 |
| ·RCPS对脾淋巴细胞最大无毒浓度的测定 | 第84-85页 |
| ·RCPS体外对淋巴细胞增殖的影响 | 第85页 |
| ·RCPS体外对脾淋巴细胞分泌细胞因子能力的影响 | 第85-86页 |
| ·RCPS在体外对NK细胞杀伤活性的影响 | 第86-87页 |
| 4 讨论 | 第87-88页 |
| ·RCPS在体外对淋巴细胞的毒性 | 第87-88页 |
| ·RCPS在体外对淋巴细胞增值能力的影响 | 第88页 |
| ·RCPS在体外对淋巴细胞分泌细胞因子的影响 | 第88页 |
| ·RCPS在体外对NK细胞杀伤活性的影响 | 第88页 |
| 5 小结 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-90页 |
| 第五章 川牛膝多糖对小鼠注射卵清白蛋白(OVA)免疫反应的影响及机理研究 | 第90-120页 |
| 1 材料 | 第90-92页 |
| ·主要试剂 | 第90-92页 |
| ·动物免疫试剂 | 第90页 |
| ·川牛膝多糖 | 第90-91页 |
| ·ELISA所用试剂 | 第91页 |
| ·T淋巴细胞增殖所用试剂 | 第91页 |
| ·胞内细胞因子及表面分子荧光染色试剂 | 第91页 |
| ·体内CTL染色主要试剂 | 第91页 |
| ·NK细胞杀伤试验所用试剂 | 第91页 |
| ·腹腔巨噬细胞吞噬试验主要试剂 | 第91-92页 |
| ·内毒素检测所用试剂 | 第92页 |
| ·主要仪器 | 第92页 |
| ·试验动物 | 第92页 |
| 2 方法 | 第92-96页 |
| ·动物分组及免疫 | 第92-93页 |
| ·血样采集 | 第93页 |
| ·内毒素检测 | 第93页 |
| ·OVA特异性IgG水平的检测 | 第93页 |
| ·OVA特异性抗体亚类(IgG1、IgG2a和IgG2b)水平的检测 | 第93页 |
| ·T淋巴细胞增殖能力检测 | 第93页 |
| ·脾淋巴细胞培养上清液中细胞因子浓度的检测 | 第93页 |
| ·胞内细胞因子染色及检测 | 第93-94页 |
| ·体内CTL杀伤能力检测 | 第94-95页 |
| ·靶细胞的制备 | 第94页 |
| ·小鼠体内CTL杀伤活性检测 | 第94-95页 |
| ·NK细胞杀伤能力检测 | 第95页 |
| ·腹腔巨噬细胞吞噬活性检测 | 第95页 |
| ·共刺激信号分子(CD40、CD80、CD86)的表达水平的检测 | 第95-96页 |
| ·CD4+CD25+Foxp3+Treg细胞的表达水平的检测 | 第96页 |
| ·统计学分析 | 第96页 |
| 3 结果 | 第96-113页 |
| ·RCPS对血清特异性IgG抗体水平的影响 | 第96页 |
| ·RCPS对血清特异性抗体亚类IgG1,IgG2a,IgG2b水平的影响 | 第96-97页 |
| ·RCPS对T淋巴细胞增殖能力的影响 | 第97-98页 |
| ·RCPS对脾淋巴细胞培养上清液中IL-4和IFN-γ含量的影响 | 第98-99页 |
| ·RCPS对胞内细胞因子表达水平的影响 | 第99-105页 |
| ·CD4~+T细胞IL-2表达水平 | 第99页 |
| ·CD4~+T细胞IL-4表达水平 | 第99-100页 |
| ·CD4~+T细胞IFN-γ表达水平 | 第100页 |
| ·CD8~+T细胞IFN-γ表达水平 | 第100-105页 |
| ·RCPS对CTL体内杀伤能力的影响 | 第105页 |
| ·RCPS对NK杀伤能力的影响 | 第105-106页 |
| ·RCPS对腹腔巨噬细胞吞噬能力的影响 | 第106-107页 |
| ·RCPS对树突细胞共刺激信号分子(CD40、CD80、CD86)表达水平的影响 | 第107-108页 |
| ·共刺激信号分子CD40表达水平 | 第107页 |
| ·共刺激信号分子CD80表达水平 | 第107-108页 |
| ·共刺激信号分子CD86表达水平 | 第108页 |
| ·RCPS对CD4~+CD25~+Foxp3~+Treg细胞的表达水平的影响 | 第108-113页 |
| ·RCPS对试验小鼠体重的影响 | 第113页 |
| 4 讨论 | 第113-117页 |
| ·RCPS对OVA受免小鼠体液免疫反应的影响 | 第113-114页 |
| ·RCPS对OVA受免小鼠细胞因子的影响 | 第114页 |
| ·RCPS对OVA受免小鼠细胞免疫反应的影响 | 第114-116页 |
| ·RCPS对OVA受免小鼠T淋巴细胞增殖能力的影响 | 第115页 |
| ·RCPS对OVA受免小鼠CTL、NK细胞杀伤能力的影响 | 第115页 |
| ·RCPS对OVA受免小鼠腹腔巨噬细胞吞噬能力的影响 | 第115-116页 |
| ·RCPS对OVA受免小鼠树突细胞(DCs)成熟的影响 | 第116页 |
| ·RCPS对OVA受免小鼠CD4~+CD25~+Foxp3~+Treg细胞的影响 | 第116-117页 |
| ·RCPS对小鼠的安全性 | 第117页 |
| 5 小结 | 第117页 |
| 参考文献 | 第117-120页 |
| 第六章 川牛膝多糖对小鼠注射口蹄疫疫苗免疫反应的影响及分子机制研究 | 第120-161页 |
| 1 材料 | 第120-121页 |
| ·主要试剂 | 第120-121页 |
| ·动物免疫试剂 | 第120页 |
| ·川牛膝多糖 | 第120页 |
| ·ELISA所用试剂 | 第120页 |
| ·T淋巴细胞增殖所用试剂 | 第120-121页 |
| ·细胞因子及表面分子荧光染色试剂 | 第121页 |
| ·体内CTL染色主要试剂 | 第121页 |
| ·NK细胞杀伤试验所用试剂 | 第121页 |
| ·腹腔巨噬细胞吞噬试验所需试剂 | 第121页 |
| ·Real-Time PCR试验所用试剂 | 第121页 |
| ·主要仪器 | 第121页 |
| ·试验动物 | 第121页 |
| 2 方法 | 第121-128页 |
| ·动物分组及免疫 | 第121-122页 |
| ·血样采集 | 第122页 |
| ·FMDV特异性IgG水平的检测 | 第122-123页 |
| ·FMDV特异性抗体亚类(IgG1、IgG2a和IgG2b)水平的检测 | 第123页 |
| ·T细胞增殖能力检测 | 第123-124页 |
| ·胞内细胞因子染色及检测 | 第124页 |
| ·体内CTL杀伤能力检测 | 第124页 |
| ·靶细胞的制备 | 第124页 |
| ·小鼠体内CTL杀伤活性检测 | 第124页 |
| ·NK细胞杀伤能力检测 | 第124页 |
| ·腹腔巨噬细胞吞噬试验 | 第124页 |
| ·Real-Time PCR检测细胞因子及信号通路分子 | 第124-128页 |
| ·总RNA的提取 | 第124-125页 |
| ·cDNA第一链的合成 | 第125-126页 |
| ·PCR引物的设计 | 第126页 |
| ·Real-time PCR反应体系及反应程序 | 第126-128页 |
| ·共刺激信号分子(CD40、CD80、CD86)的检测 | 第128页 |
| ·CD4~+CD25~+Foxp3~+Treg细胞的检测 | 第128页 |
| ·统计学分析 | 第128页 |
| 3 结果 | 第128-150页 |
| ·RCPS对血清FMDV特异性IgG抗体水平的影响 | 第128页 |
| ·RCPS对血清FMDV特异性抗体亚类(IgG1,IgG2a,IgG2b)水平的影响 | 第128-130页 |
| ·RCPS对T淋巴细胞增殖能力的影响 | 第130页 |
| ·RCPS对胞内细胞因子表达水平的影响 | 第130-136页 |
| ·CD4~+T细胞IL-2表达水平 | 第130-131页 |
| ·CD4~+T细胞IL-4表达水平 | 第131页 |
| ·CD4~+T细胞IFN-γ表达水平 | 第131页 |
| ·CD8~+T细胞IFN-γ表达水平 | 第131-136页 |
| ·RCPS对CTL体内杀伤能力的影响 | 第136-137页 |
| ·RCPS对NK体内杀伤能力的影响 | 第137页 |
| ·RCPS对腹腔巨噬细胞的吞噬活性的影响 | 第137-138页 |
| ·RCPS对DCs共刺激信号分子(CD40、CD80、CD86)的表达水平的影响 | 第138-143页 |
| ·共刺激信号分子CD40表达水平 | 第138页 |
| ·共刺激信号分子CD80表达水平 | 第138-139页 |
| ·共刺激信号分子CD86表达水平 | 第139-143页 |
| ·RCPS对树突细胞MHC Ⅰ、MHC Ⅱ mRNA表达水平的影响 | 第143页 |
| ·RCPS对DC趋化因子受体CXCR4、CCR7 mRNA表达水平的影响 | 第143-144页 |
| ·RCPS对脾淋巴细胞中IL-2、IL-4、IL-10、IFN-γ的mRNA表达水平 | 第144-145页 |
| ·RCPS对脾淋巴细胞中转录因子T-bet和GATA-3的mRNA表达水平的影响 | 第145-146页 |
| ·RCPS对脾淋巴细胞中TLR-2、TLR-4 mRNA表达水平的影响 | 第146-147页 |
| ·RCPS对脾淋巴细胞中TGF-β mRNA表达水平的影响 | 第147-148页 |
| ·RCPS对CD4~+CD25~+Foxp3~+Treg细胞表达水平的影响 | 第148-150页 |
| ·RCPS对试验小鼠体重的影响 | 第150页 |
| 4 讨论 | 第150-157页 |
| ·RCPS对FMDV受免小鼠体液免疫反应的影响 | 第150-151页 |
| ·RCPS对FMDV受免小鼠细胞因子的产生和初始T细胞分化的影响 | 第151-152页 |
| ·RCPS对FMDV受免小鼠细胞免疫反应的影响 | 第152-153页 |
| ·RCPS对FMDV受免小鼠T淋巴细胞增殖能力的影响 | 第152页 |
| ·RCPS对FMDV受免小鼠CTL、NK细胞杀伤能力的影响 | 第152-153页 |
| ·RCPS对FMDV受免小鼠腹腔巨噬细胞吞噬能力的影响 | 第153页 |
| ·RCPS对FMDV受免小鼠树突细胞成熟及迁移的影响 | 第153-155页 |
| ·RCPS对树突细胞成熟的影响 | 第153-154页 |
| ·RCPS对树突细胞迁移的影响 | 第154-155页 |
| ·RCPS对FMDV受免小鼠TOLL样受体(TLR-2,TLR-4)的影响 | 第155页 |
| ·RCPS对FMDV受免小鼠转化生长因子β(TGF-β)的影响 | 第155-156页 |
| ·RCPS对FMDV受免小鼠CD4~+CD25~+Foxp3~+Treg细胞的影响 | 第156页 |
| ·RCPS对小鼠的安全性 | 第156-157页 |
| 5 小结 | 第157页 |
| 参考文献 | 第157-161页 |
| 第七章 全文结论 | 第161-162页 |
| 本研究的创新点 | 第162页 |
| 有待进一步研究的问题 | 第162-163页 |
| 附录：试验的部分图片 | 第163-170页 |
| 致谢 | 第170-171页 |
| 攻读博士期间发表的学术论文及参加科研情况 | 第171页 |
