裂殖壶菌SL1101的分离鉴定、诱变育种与发酵优化
摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-9页 |
1 前言 | 第9-25页 |
·DHA简介 | 第9-16页 |
·DHA的结构和性质 | 第9页 |
·DHA的生理作用 | 第9-14页 |
·DHA的应用 | 第14-16页 |
·DHA的市场行情 | 第16页 |
·DHA的来源 | 第16-20页 |
·鱼油 | 第16-17页 |
·微生物油脂 | 第17-20页 |
·裂殖壶菌的研究 | 第20-23页 |
·裂殖壶菌的简介 | 第20-21页 |
·裂殖壶菌的选育 | 第21-22页 |
·裂殖壶菌发酵优化的研究 | 第22-23页 |
·选题的意义和研究内容 | 第23-25页 |
·选题的意义 | 第23页 |
·研究内容 | 第23-25页 |
2 材料与方法 | 第25-36页 |
·实验材料 | 第25-26页 |
·主要试剂 | 第25页 |
·主要仪器 | 第25-26页 |
·培养基 | 第26页 |
·实验方法 | 第26-36页 |
·裂殖壶菌的分离与筛选 | 第26-28页 |
·菌株SL1101的鉴定 | 第28-31页 |
·分析测定方法 | 第31-33页 |
·生长曲线的测定 | 第31页 |
·生物量的测定 | 第31页 |
·油脂提取方法 | 第31页 |
·DHA含量测定方法 | 第31-33页 |
·菌株SL1101的紫外诱变 | 第33-34页 |
·菌悬液浓度的选择 | 第33页 |
·照射时间的选择 | 第33页 |
·高产菌株的筛选 | 第33-34页 |
·稳定性考察 | 第34页 |
·裂殖壶菌的发酵优化 | 第34-36页 |
·培养基的优化 | 第34-35页 |
·培养条件的优化 | 第35-36页 |
3 结果与分析 | 第36-54页 |
·菌株的分离纯化 | 第36-37页 |
·菌株DHA含量测定 | 第37-38页 |
·标准曲线的绘制 | 第37-38页 |
·重现性试验 | 第38页 |
·富含DHA裂殖壶菌的筛选 | 第38-39页 |
·初筛 | 第38页 |
·复筛 | 第38页 |
·菌株SL1101的脂肪酸气相色谱分析 | 第38-39页 |
·菌株SL1101的分类鉴定 | 第39-41页 |
·菌株SL1101的形态学特征 | 第39-40页 |
·裂殖壶菌SL1101的分子鉴定 | 第40-41页 |
·裂殖壶菌SL1101的鉴定结果 | 第41页 |
·诱变育种 | 第41-44页 |
·菌株SL1101的生长过程曲线 | 第41-42页 |
·菌液浓度的选择 | 第42页 |
·照射时间的选择 | 第42-43页 |
·高产菌株的筛选 | 第43页 |
·菌株稳定性考察 | 第43-44页 |
·裂殖壶菌的发酵优化 | 第44-54页 |
·培养基的优化 | 第44-49页 |
·培养条件的优化 | 第49-54页 |
4 讨论 | 第54-57页 |
·裂殖壶菌的分离 | 第54页 |
·高产DHA裂殖壶菌的筛选 | 第54-55页 |
·紫外诱变选育优良菌种 | 第55页 |
·裂殖壶菌产DHA的发酵优化 | 第55-57页 |
5 结论 | 第57-58页 |
项目资助 | 第58-59页 |
参考文献 | 第59-67页 |
附录 | 第67-69页 |
致谢 | 第69-70页 |