| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 第一章 植物体内过氧化物酶和抗氧化系统对铝毒胁迫反应的研究进展 | 第13-34页 |
| ·铝对植物根系的毒害作用 | 第14-15页 |
| ·过氧化物酶在植物生长发育中的作用 | 第15-21页 |
| ·过氧化物酶在种子萌发中的作用 | 第15-16页 |
| ·细胞的生长和细胞壁的松弛 | 第16-17页 |
| ·细胞壁的交联 | 第17-21页 |
| ·木质化和木栓化 | 第18-20页 |
| ·二阿魏酸键和伸展蛋白网络 | 第20-21页 |
| ·铝胁迫下植物根系生长与过氧化物酶活性的关系 | 第21-22页 |
| ·铝胁迫诱导的氧化胁迫及其抗氧化酶活性的变化 | 第22-31页 |
| ·铝毒害诱导的 ROS产生 | 第24-27页 |
| ·线粒体功能失调引起 ROS的产生 | 第26-27页 |
| ·细胞壁氧化酶和过氧化物酶 | 第27页 |
| ·ROS引起的毒害作用 | 第27-29页 |
| ·膜脂质过氧化 | 第27-28页 |
| ·细胞死亡 | 第28-29页 |
| ·铝毒害下植物体内抗氧化系统的响应 | 第29-31页 |
| ·问题的提出及本研究的技术路线 | 第31-34页 |
| 第二章 铝胁迫水平对小麦根尖过氧化氢含量和细胞壁过氧化物酶活性的影响 | 第34-42页 |
| ·引言 | 第34页 |
| ·材料与方法 | 第34-36页 |
| ·植物培养 | 第34-35页 |
| ·小麦根长和根尖铝含量的测定 | 第35页 |
| ·根尖可溶态和细胞壁离子键结合态过氧化物酶的提取和测定 | 第35-36页 |
| ·根尖 H_2O_2的提取和测定 | 第36页 |
| ·结果与分析 | 第36-40页 |
| ·铝对小麦根系伸长和根尖铝含量的影响 | 第36-37页 |
| ·铝对根尖可溶态和细胞壁离子键结合态 GPX活性的影响 | 第37-38页 |
| ·铝对根尖可溶态和细胞壁离子键结合态 CAPX活性的影响 | 第38-39页 |
| ·铝对2个小麦基因型根尖过氧化氢含量的影响 | 第39-40页 |
| ·讨论 | 第40-41页 |
| ·小结 | 第41-42页 |
| 第三章 铝胁迫时间对小麦根尖过氧化氢含量和细胞壁过氧化物酶活性的影响 | 第42-53页 |
| ·引言 | 第42页 |
| ·材料与方法 | 第42-44页 |
| ·植物培养 | 第43页 |
| ·小麦根长和根尖铝含量的测定 | 第43页 |
| ·根尖可溶态和细胞壁离子键结合态过氧化物酶的提取和测定 | 第43-44页 |
| ·根尖 H_2O_2的提取和测定 | 第44页 |
| ·细胞活力的测定 | 第44页 |
| ·结果与分析 | 第44-50页 |
| ·铝对小麦根系伸长和根尖铝含量的影响 | 第44-46页 |
| ·铝对根尖可溶态和细胞壁离子键结合态 GPX活性的影响 | 第46-47页 |
| ·铝对根尖可溶态和细胞壁离子键结合态 CAPX活性的影响 | 第47-49页 |
| ·铝对2个小麦基因型根尖过氧化氢含量的影响 | 第49页 |
| ·铝对2个小麦基因型根尖 Evans blue吸收的影响 | 第49-50页 |
| ·讨论 | 第50-51页 |
| ·小结 | 第51-53页 |
| 第四章 铝胁迫对不同耐铝性小麦基因型根尖过氧化氢含量和抗氧化酶活性的影响 | 第53-62页 |
| ·引言 | 第53-54页 |
| ·材料与方法 | 第54-56页 |
| ·植物培养 | 第54页 |
| ·小麦根长和根尖铝含量的测定 | 第54页 |
| ·根尖抗氧化酶的提取与测定 | 第54-55页 |
| ·根尖 MDA的提取与测定 | 第55页 |
| ·H_2O_2的提取与测定 | 第55-56页 |
| ·结果与分析 | 第56-59页 |
| ·铝对小麦根生长和根尖铝含量的影响 | 第56-57页 |
| ·铝对小麦根尖 H_2O_2含量的影响 | 第57页 |
| ·铝对小麦根尖 MDA含量的影响 | 第57-58页 |
| ·铝对小麦根尖抗氧化酶活性的影响 | 第58-59页 |
| ·讨论 | 第59-61页 |
| ·小结 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-76页 |
| 攻读硕士学位期间完成的论文 | 第76页 |
