| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 前言 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-32页 |
| 1．1 引言 | 第11页 |
| 1．2 几丁质和壳聚糖的概况及应用 | 第11-16页 |
| 1．2．1 几丁质和壳聚糖 | 第11-12页 |
| 1．2．2 壳聚糖在各领域的应用 | 第12-16页 |
| 1．2．2．1 基因载体 | 第12-14页 |
| 1．2．2．2 抗菌抑菌 | 第14-15页 |
| 1．2．2．3 食品方面的用途 | 第15-16页 |
| 1．3 壳低聚糖的制备 | 第16-21页 |
| 1．3．1 酸解法 | 第16-17页 |
| 1．3．2 氧化法 | 第17-18页 |
| 1．3．2．1 H_2O_2水解法 | 第17页 |
| 1．3．2．2 H_2O_2-NaClO_2法 | 第17页 |
| 1．3．2．3 NaBO_3氧化法 | 第17-18页 |
| 1．3．3 超声波法 | 第18页 |
| 1．3．4 酶解法 | 第18-21页 |
| 1．3．4．1 非专一性酶法 | 第19-20页 |
| 1．3．4．2 专一性酶法 | 第20-21页 |
| 1．4 壳聚糖的质量检测 | 第21-26页 |
| 1．4．1 壳聚糖含量的测定 | 第21-22页 |
| 1．4．2 壳聚糖相对分子量的测定 | 第22-24页 |
| 1．4．3 壳聚糖脱乙酰度(DDA)的测定 | 第24-25页 |
| 1．4．4 水分及灰分的测定 | 第25-26页 |
| 1．4．4．1 水分的测定 | 第25页 |
| 1．4．4．2 灰分的测定 | 第25-26页 |
| 1．5 固定化酶的研究 | 第26-31页 |
| 1．5．1 固定化方法的分类 | 第26-29页 |
| 1．5．1．1 包埋法 | 第26-27页 |
| 1．5．1．2 吸附法 | 第27-28页 |
| 1．5．1．3 共价法 | 第28页 |
| 1．5．1．4 交联法 | 第28-29页 |
| 1．5．2 固定化载体 | 第29-31页 |
| 1．6 展望 | 第31-32页 |
| 第二章 实验材料、仪器和方法 | 第32-37页 |
| 2．1 材料 | 第32页 |
| 2．1．1 实验材料 | 第32页 |
| 2．1．2 菌种及保藏 | 第32页 |
| 2．1．3 培养基 | 第32页 |
| 2．2 主要仪器设备及其用途 | 第32页 |
| 2．3 分析方法 | 第32-37页 |
| 2．2．1 还原糖浓度的测定 | 第33-34页 |
| 2．2．2 酶活力的测定 | 第34-35页 |
| 2．2．3 蛋白质浓度的测定 | 第35-36页 |
| 2．2．4 壳聚糖特性粘度的测定 | 第36-37页 |
| 第三章 青霉菌产壳聚糖酶制备低聚糖的研究 | 第37-47页 |
| 3．1 前言 | 第37页 |
| 3．2 实验材料与方法 | 第37-39页 |
| 3．2．1 实验设备 | 第37页 |
| 3．2．2 实验材料 | 第37页 |
| 3．2．3 实验方法 | 第37-39页 |
| 3．2．3．1 特性黏度测定 采用乌氏粘度法 | 第37页 |
| 3．2．3．2 还原糖浓度测定 采用 DNS法 | 第37页 |
| 3．2．3．3 酶活力测定 | 第37-38页 |
| 3．2．3．4 纸色谱方法 | 第38页 |
| 3．2．3．5 分子量和特性黏度关系测定 | 第38页 |
| 3．2．3．6 壳聚糖酶的制备及分离 | 第38页 |
| 3．2．3．7 发酵法及内切酶法制备低分子量壳聚糖 | 第38-39页 |
| 3．3 结果与讨论 | 第39-45页 |
| 3．3．1 壳聚糖酶的制备及分离 | 第39页 |
| 3．3．2 壳聚糖酶的稳定性及米氏常数测定 | 第39-40页 |
| 3．3．2．1 壳聚糖酶的保存稳定性 | 第39-40页 |
| 3．3．2．2 壳聚糖酶米氏常数的测定 | 第40页 |
| 3．3．3 壳聚糖酶的降解特性 | 第40-43页 |
| 3．3．3．1 酶切方式的确定 | 第40-42页 |
| 3．3．3．2 加酶量对反应过程的影响 | 第42页 |
| 3．3．3．3 底物浓度对降解过程的影响 | 第42-43页 |
| 3．3．4 酶法制备低分子量壳聚糖 | 第43-45页 |
| 3．3．4．1 MHS方程中常数 K、a的确定 | 第43页 |
| 3．3．4．2 加热前后粘度变化 | 第43-44页 |
| 3．3．4．3 不同分子量壳聚糖的制备 | 第44-45页 |
| 3．3．5 发酵液中低分子量壳聚糖的分离 | 第45页 |
| 3．4 结论 | 第45-47页 |
| 第四章 壳聚糖内切酶的固定化及其降解特性 | 第47-61页 |
| 4．1 前言 | 第47页 |
| 4．2 材料和方法 | 第47-49页 |
| 4．2．1 实验材料 | 第47页 |
| 4．2．2 实验方法 | 第47-49页 |
| 4．1．2．1 载体的前处理 | 第47-48页 |
| 4．1．2．2 壳聚糖内切酶的制备 | 第48页 |
| 4．1．2．3 载体的交联 | 第48页 |
| 4．1．2．4 酶的固定化 | 第48-49页 |
| 4．1．2．5 壳聚糖固定化壳聚糖酶的可行性 | 第49页 |
| 4．1．2．6 酶活力测定 | 第49页 |
| 4．3 结果与讨论 | 第49-60页 |
| 4．3．1 壳聚糖胶板固定壳聚糖酶的可行性 | 第49-50页 |
| 4．3．2 壳聚糖内切酶的制备 | 第50-51页 |
| 4．3．3 壳聚糖酶固定化载体的选择 | 第51-52页 |
| 4．3．3．1 5种载体固定化壳聚糖酶效果比较 | 第51-52页 |
| 4．2．2．2 不同载体固定化所得固定化壳聚糖酶储存稳定性比较 | 第52页 |
| 4．3．4 DEAE纤维素固定化壳聚糖内切酶的条件研究 | 第52-55页 |
| 4．3．4．1 戊二醛浓度的影响 | 第52-53页 |
| 4．3．4．2 加酶量的影响 | 第53-54页 |
| 4．3．4．3 pH值的影响 | 第54页 |
| 4．3．4．4 固定化时间的影响 | 第54-55页 |
| 4．3．4．5 最优条件下壳聚糖内切酶的固定化 | 第55页 |
| 4．3．5 固定化酶的性质研究 | 第55-58页 |
| 4．3．5．1 温度对固定化酶活力的影响 | 第55-56页 |
| 4．3．5．2 pH对固定化酶活力的影响 | 第56-57页 |
| 4．3．5．3 固定化酶操作稳定性 | 第57页 |
| 4．3．5．4 固定化酶的保存稳定性 | 第57-58页 |
| 4．3．6 反应器中固定化酶降解壳聚糖的研究 | 第58-60页 |
| 4．3．6．1 反应装置 | 第58-59页 |
| 4．3．6．2 不同流速下产物中还原糖的变化 | 第59页 |
| 4．3．6．3 反应器中固定化酶的失活情况 | 第59-60页 |
| 4．4 结论 | 第60-61页 |
| 第五章 壳聚糖溶液脱盐、喷雾干燥及质量检测 | 第61-71页 |
| 5．1 前言 | 第61页 |
| 5．2 材料和方法 | 第61-64页 |
| 5．2．1 实验材料和试剂 | 第61页 |
| 5．2．2 实验方法 | 第61-64页 |
| 5．2．2．1 阴离子树脂的预处理、保存及再生 | 第61-62页 |
| 5．2．2．2 脱盐树脂的选择 | 第62页 |
| 5．2．2．3 壳低聚糖溶液的脱盐 | 第62页 |
| 5．2．2．4 喷雾干燥条件的确定 | 第62-63页 |
| 5．2．2．5 分子量测定 | 第63页 |
| 5．2．2．6 脱乙酰度测定 | 第63页 |
| 5．2．2．7 水分的测定 | 第63-64页 |
| 5．2．2．8 灰分的测定 | 第64页 |
| 5．3 结果与讨论 | 第64-70页 |
| 5．3．1 4种阴离子树脂的质量指标 | 第64页 |
| 5．3．2 4种树脂吸附乳酸根效果比较 | 第64-65页 |
| 5．3．3 离子交换法去除乳酸根 | 第65-66页 |
| 5．3．3．1 离子交换装置 | 第65页 |
| 5．3．3．2 电导率和pH值的变化 | 第65-66页 |
| 5．3．4 喷雾干燥法制备壳聚糖 | 第66-67页 |
| 5．3．5 低聚糖产品分子量的测定 | 第67-69页 |
| 5．3．6 产品脱乙酰度的测定 | 第69-70页 |
| 5．3．7 产品水分的测定 | 第70页 |
| 5．4 结论 | 第70-71页 |
| 结论与建议 | 第71-73页 |
| 攻读硕士学位期间发表录用的论文 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-79页 |
