| 文献综述 | 第1-28页 |
| 试验研究 | 第28-93页 |
| 第一章 猪圆环病毒Ⅰ型YA1株的全基因克隆及生物信息学分析 | 第28-44页 |
| 1．材判 | 第28-29页 |
| 1．1 种毒和细胞 | 第28页 |
| 1．2 质粒和菌株 | 第28-29页 |
| 1．3 主要酶和其它试剂 | 第29页 |
| 1．4 仪器设备 | 第29页 |
| 2．方法 | 第29-32页 |
| 2．1 猪圆环病毒Ⅰ型YA1株全基因扩增 | 第29-30页 |
| 2．2 扩增产物的克隆及序列测定 | 第30-32页 |
| 2．3 猪圆坏病毒Ⅰ型YA1株全基因组的生物信息学分析 | 第32页 |
| 3．试验结果 | 第32-41页 |
| 3．1 PCR扩增 | 第32页 |
| 3．2 重组质粒的酶切鉴定 | 第32页 |
| 3．3 序列测定与分析 | 第32-41页 |
| 4．讨论 | 第41-43页 |
| 4．1 关于猪圆环病毒Ⅰ型YA1株全基因的克隆及序列测定 | 第41-42页 |
| 4．2 关于猪圆环病毒Ⅰ型YA1株全基因组的序列分析 | 第42-43页 |
| 4．3 关于PCV1-YA1株主要ORF编码氨基酸序列的推导分析 | 第43页 |
| 5．结论 | 第43-44页 |
| 第二章 猪PCV2-SC株的分离鉴定及其全基因克隆与生物信息学分析 | 第44-61页 |
| 1．材料 | 第44-45页 |
| 1．1 种毒和细胞 | 第44页 |
| 1．2 质粒和菌株 | 第44页 |
| 1．3 主要酶和其它试剂 | 第44页 |
| 1．4 阳性血清及诊断试剂 | 第44-45页 |
| 1．5 仪器设备 | 第45页 |
| 2．方法 | 第45-49页 |
| 2．1 猪圆环病毒Ⅱ型SC株的分离鉴定 | 第45-46页 |
| 2．2 猪圆环病毒Ⅱ型SC株全基因扩增 | 第46-47页 |
| 2．3 扩增产物的克隆及序列测定 | 第47-49页 |
| 2．4 猪圆环病毒Ⅱ型SC株全基因组的生物信息学分析 | 第49页 |
| 3．试验结果 | 第49-57页 |
| 3．1 猪圆坏病毒Ⅱ型SC株的分离鉴定 | 第49页 |
| 3．2 PCR扩增 | 第49页 |
| 3．3 重组质粒的酶切鉴定 | 第49-50页 |
| 3．4 序列测定与分析 | 第50-54页 |
| 3．5 PCV2-SC株ORF1和ORF2氨基酸序列分析 | 第54-57页 |
| 4．讨论 | 第57-60页 |
| 4．1 关于猪圆环病毒Ⅱ型SC株的分离鉴定 | 第57-58页 |
| 4．2 关于猪圆环病毒Ⅱ型SC株全基因的PCR扩增 | 第58页 |
| 4．3 关于核苷酸及其推导的氨基酸序列分析 | 第58-60页 |
| 5．结论 | 第60-61页 |
| 第三章 猪圆环病毒Ⅰ型和Ⅱ型基因重组病毒株的构建及其部分生物学特性研究 | 第61-78页 |
| 1．材料 | 第61-62页 |
| 1．1 种毒和细胞 | 第61页 |
| 1．2 质粒和菌株 | 第61页 |
| 1．3 主要酶和其它试剂 | 第61-62页 |
| 1．4 仪器设备 | 第62页 |
| 2．方法 | 第62-68页 |
| 2．1 重组质粒pMD18-T-PCV1-2和pMD18-T-PCV2-1的构建 | 第62-65页 |
| 2．2 重组病毒PCV1-2株和PCV2-1株的构建 | 第65-66页 |
| 2．3 重组病毒PCV1-2株和PCV2-1株的部分生物学特性研究 | 第66-68页 |
| 3．试验结果 | 第68-73页 |
| 3．1 重组质粒pMD18-T-PCV1-2和pMD18-T-PCV2-1的构建 | 第68-71页 |
| 3．2 重组病毒PCV1-2株和PCV2-1株的构建 | 第71-72页 |
| 3．3 重组病毒PCV1-2株和PCV2-1株的部分生物学特性研究 | 第72-73页 |
| 4．讨论 | 第73-77页 |
| 4．1 关于重组质粒pMD18-T-PCV1-2和pMD18-T-PCV2-1的构建 | 第73-74页 |
| 4．2 关于重组病毒PCV1-2株和PCV2-1株的构建 | 第74-75页 |
| 4．3 关于重组病毒PCV1-2株和PCV2-1株对仔猪的致病性 | 第75-76页 |
| 4．4 关于重组病毒PCV1-2株和PCV2-1株的免疫原性 | 第76-77页 |
| 5．结论 | 第77-78页 |
| 第四章 猪圆环病毒Ⅱ型部分基因组真核表达质粒的构建及其在IBRS细胞包中的表达 | 第78-93页 |
| 1．材料 | 第78-79页 |
| 1．1 质粒和菌株 | 第78页 |
| 1．2 主要酶和其它试剂 | 第78页 |
| 1．3 试验动物 | 第78页 |
| 1．4 阳性血清和诊断试剂 | 第78页 |
| 1．5 仪器设备 | 第78-79页 |
| 2．方法 | 第79-85页 |
| 2．1 真核表达质粒pEGFP-C_1-PCV2-SC的构建 | 第79-80页 |
| 2．2 真核表达质粒pEGFP-C_1-PCV2-SC-A的构建 | 第80-82页 |
| 2．3 荧光抗体检测PCV2-SC株部分基因组在真核表达质粒pEGFP-C_1中的表达 | 第82页 |
| 2．4 真核表达质粒pEGFP-C_1-PCV2-SC-A接种仔猪后抗体水平检测 | 第82-85页 |
| 3．试验结果 | 第85-89页 |
| 3．1 真核表达质粒pEGFP-C_1-PCV2-SC的构建 | 第85页 |
| 3．2 真核表达质粒pEGFP-C_1-PCV2-SC-A的构建 | 第85-88页 |
| 3．3 荧光抗体检测PCV2-SC株部分基因组在真核表达质粒pEGFP-C_1中的表达 | 第88-89页 |
| 3．4 真核表达质粒pEGFP-C_1-PCV2-SC-A接种仔猪后抗体水平检测 | 第89页 |
| 4．讨论 | 第89-92页 |
| 4．1 关于真核表达质粒pEGFP-C_1-PCV2-SC-A的构建 | 第89-90页 |
| 4．2 关于PCV2-SC株部分基因组在真核表达质粒pEGFP-C_1中的表达 | 第90-91页 |
| 4．3 关于真核表达质粒pEGFP-C_1-PCV2-SC-A接种仔猪后抗体水平检测 | 第91-92页 |
| 5．结论 | 第92-93页 |
| 参考文献 | 第93-107页 |
| 致谢 | 第107-108页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第108-109页 |
| 附录 | 第109-127页 |
