| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第11-27页 |
| 1.1 引言 | 第11页 |
| 1.2 丁醇简介 | 第11-13页 |
| 1.2.1 丁醇的理化性质及用途 | 第11-12页 |
| 1.2.2 丁醇的生产方法 | 第12-13页 |
| 1.3 生物丁醇概述 | 第13-17页 |
| 1.3.1 丁醇发酵菌株 | 第13-14页 |
| 1.3.2 发酵法制丁醇的发展史 | 第14-15页 |
| 1.3.3 发酵法制丁醇存在的问题及研究 | 第15-17页 |
| 1.4 生物丁醇的代谢途径 | 第17-20页 |
| 1.5 蛋白质组学概述 | 第20-22页 |
| 1.5.1 蛋白质组学的提出与发展 | 第20-21页 |
| 1.5.2 蛋白质组学的主要研究方法 | 第21-22页 |
| 1.5.3 蛋白质组学的应用 | 第22页 |
| 1.6 蛋白质组学在生物丁醇中的应用 | 第22-24页 |
| 1.7 文论文研究目的、意义及内容 | 第24-27页 |
| 1.7.1 研究目的和意义 | 第24-25页 |
| 1.7.2 研究内容 | 第25-27页 |
| 第二章 实验材料、实验方法及分析方法 | 第27-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第27-30页 |
| 2.1.1 菌种 | 第27页 |
| 2.1.2 试剂 | 第27-28页 |
| 2.1.3 主要仪器及设备 | 第28-29页 |
| 2.1.4 培养基 | 第29-30页 |
| 2.1.5 载气 | 第30页 |
| 2.2 实验方法 | 第30页 |
| 2.2.1 种子培养 | 第30页 |
| 2.2.2 摇瓶扩大培养 | 第30页 |
| 2.2.3 发酵罐培养 | 第30页 |
| 2.3 分析方法 | 第30-33页 |
| 2.3.1 菌体浓度测定 | 第30-31页 |
| 2.3.2 葡萄糖和乙酸浓度测定 | 第31页 |
| 2.3.3 产物浓度测定 | 第31页 |
| 2.3.4 蛋白质谱鉴定 | 第31-33页 |
| 第三章 芽孢杆菌Bacillus. TSH1发酵特性 | 第33-39页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 Bacillus. TSH1的发酵 | 第33-35页 |
| 3.3 通空气对Bacillus. TSH1发酵的影响 | 第35-36页 |
| 3.4 不同丁醇发酵菌株的特性对比 | 第36-39页 |
| 第四章 Bacillus. TSH1丁醇代谢网络及其酶活检测方法 | 第39-49页 |
| 4.1 引言 | 第39页 |
| 4.2 Bacillus. TSH1不同发酵时期的比酶活检测 | 第39-41页 |
| 4.2.1 样品处理 | 第39-40页 |
| 4.2.2 酶活检测 | 第40-41页 |
| 4.3 Bacillus. TSH1不同发酵时期的比酶活分析 | 第41-44页 |
| 4.3.1 乙醇脱氢酶活性变化 | 第41-42页 |
| 4.3.2 丁醛/醇脱氢酶活性变化 | 第42-43页 |
| 4.3.3 辅酶A转移酶/乙酰乙酸脱羧酶活性变化 | 第43-44页 |
| 4.4 Bacillus. TSH1与其他丁醇发酵菌株的酶活比较 | 第44-45页 |
| 4.5 通空气条件下酶活的检测 | 第45-46页 |
| 4.6 小结 | 第46-49页 |
| 第五章 Bacillus. TSH1关键酶编码基因mRNA的研究 | 第49-55页 |
| 5.1 引言 | 第49页 |
| 5.2 总RNA提取与cDNA的合成 | 第49-50页 |
| 5.2.1 Bacillus.TSH1中RNA的提取 | 第49-50页 |
| 5.2.2 RT反应 | 第50页 |
| 5.3 Bacillus. TSH1发酵不同时期的关键酶表达量的异同 | 第50-53页 |
| 5.4 小结 | 第53-55页 |
| 第六章 Bacillus. TSH1基于蛋白质组学的研究 | 第55-63页 |
| 6.1 引言 | 第55页 |
| 6.2 SDS-PAGE | 第55-57页 |
| 6.3 双向电泳(2-D) | 第57-61页 |
| 6.4 小结 | 第61-63页 |
| 第七章 结论与展望 | 第63-65页 |
| 7.1 结论 | 第63-64页 |
| 7.2 展望 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-71页 |
| 致谢 | 第71-73页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第73页 |
