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基于Pyolysin抗原优势区的重组免疫原制备与免疫保护效果评价

摘要第10-11页
英文摘要第11-12页
1 前言第13-19页
    1.1 T.pyogenes概况第13-14页
        1.1.1 T.pyogenes生物学特性第13页
        1.1.2 T.pyogenes感染第13-14页
        1.1.3 T.pyogenes感染的防治第14页
        1.1.4 T.pyogenes的毒力因子第14页
    1.2 T.pyogenes溶血素第14-16页
        1.2.1 PLO在T.pyogenes感染中的重要性第15页
        1.2.2 PLO在预防T.pyogenes感染中的应用第15-16页
    1.3 CDCs与PLO第16-17页
    1.4 细胞膜作为疫苗佐剂的研究概况第17-18页
    1.5 研究的目的与意义第18-19页
2 材料与方法第19-34页
    2.1 材料第19-21页
        2.1.1 主要仪器第19-20页
        2.1.2 试验动物、细胞第20页
        2.1.3 菌种、质粒及引物第20页
        2.1.4 主要试剂第20页
        2.1.5 溶液的配制第20-21页
    2.2 方法第21-34页
        2.2.1 PLO D123截短蛋白的制备第21-26页
        2.2.2 PLO D123截短蛋白与不同动物抗rPLO多克隆抗体的反应性第26-27页
        2.2.3 PLO D123中B细胞线性抗原表位的筛选第27页
        2.2.4 其他截短肽与不同动物抗rPLO多克隆抗体的反应性分析第27页
        2.2.5 表位肽多克隆抗体的制备及抗溶血活性测定第27-28页
        2.2.6 疫苗重组抗原的制备第28-31页
        2.2.7 红细胞及红细胞膜的制备第31-32页
        2.2.8 重组抗原细胞膜结合能力测定第32页
        2.2.9 重组抗原的细胞毒性检测第32页
        2.2.10 T.pyogenes感染小鼠LD50的测定第32-33页
        2.2.11 疫苗的制备及免疫效果评价第33-34页
3 结果与分析第34-48页
    3.1 PLO D123截短片段的制备第34页
    3.2 PLO D123截短蛋白与不同动物抗rPLO多克隆抗体的反应性第34-36页
        3.2.1 重组蛋白rPLO的表达及纯化第34-35页
        3.2.2 PLO D123截短蛋白与不同动物抗rPLO多克隆抗体的反应性第35-36页
    3.3 PLO D123中B细胞线性抗原表位的筛选第36-37页
    3.4 其他截短肽与不同动物抗rPLO多克隆抗体的反应性分析第37-38页
    3.5 表位肽多克隆抗体的鉴定及抗溶血活性分析第38-42页
        3.5.1 重组蛋白的表达及纯化第38页
        3.5.2 表位肽多克隆抗体滴度测定第38-39页
        3.5.3 表位肽多克隆抗体反应性分析第39-40页
        3.5.4 表位肽多克隆抗体抗溶血活性测定第40-42页
    3.6 疫苗重组抗原的制备第42-43页
        3.6.1 重组抗原原核表达质粒的构建第42页
        3.6.2 重组抗原的表达及纯化第42-43页
    3.7 重组抗原细胞膜结合能力测定第43-44页
    3.8 重组抗原细胞毒性检测第44-45页
    3.9 小鼠T.pyogenes感染LD50的测定第45-46页
        3.9.1 T.pyogenes的鉴定第45页
        3.9.2 T.pyogenes冻干菌的计数第45页
        3.9.3 小鼠感染T.pyogenes半数致死剂量的测定第45-46页
    3.10 疫苗免疫效果评价第46-48页
        3.10.1 免疫血清特异性抗体检测第46-47页
        3.10.2 免疫保护效果分析第47-48页
4 讨论第48-52页
    4.1 PLO D123截短片段与不同动物抗rPLO多抗的反应性分析第48-49页
    4.2 表位肽多克隆抗体的特异性及抗溶血活性分析第49-50页
    4.3 疫苗重组抗原特性的分析第50页
    4.4 疫苗免疫效果评价第50-52页
5 结论第52-53页
致谢第53-54页
参考文献第54-59页
攻读硕士学位期间发表的学术论文第59页

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