摘要 | 第9-10页 |
Abstract | 第10-11页 |
1 前言 | 第12-17页 |
1.1 无特定病原体实验动物的概述 | 第12页 |
1.2 SPF鸭的培育 | 第12-16页 |
1.2.1 SPF鸭的概述 | 第12-13页 |
1.2.2 SPF鸭培育现状 | 第13页 |
1.2.3 SPF鸭种群质量监测 | 第13-15页 |
1.2.4 SPF鸭的培育存在的问题 | 第15页 |
1.2.5 SPF鸭的应用 | 第15-16页 |
1.3 本研究的目的与意义 | 第16-17页 |
2 材料 | 第17-18页 |
2.1 病毒分离株 | 第17页 |
2.2 实验动物 | 第17页 |
2.3 生化试剂 | 第17页 |
2.4 主要仪器和设备 | 第17-18页 |
3 方法 | 第18-28页 |
3.1 SPF种群繁育 | 第18-19页 |
3.2 SPF种群微生物学净化 | 第19-21页 |
3.2.1 微生物学监测的病原种类及监测频率 | 第19-20页 |
3.2.2 SPF鸭种群病原学检测 | 第20-21页 |
3.2.3 SPF鸭种群血清学检测方法 | 第21页 |
3.3 SPF鸭种群遗传学检测 | 第21-23页 |
3.3.1 血液基因组DNA的提取 | 第22页 |
3.3.2 PCR扩增及产物检测 | 第22页 |
3.3.3 扩增产物的STR扫描 | 第22页 |
3.3.4 数据分析 | 第22-23页 |
3.4 SPF种群饲料学检测 | 第23页 |
3.4.1 饲料营养学检测 | 第23页 |
3.4.2 饲料微生物学检测 | 第23页 |
3.5 SPF金定鸭和鸭胚的应用 | 第23-28页 |
3.5.1 SPF金定鸭对DHV-I和DPV敏感性 | 第23-24页 |
3.5.2 SPF金定鸭胚对DPV和DHV-I敏感性 | 第24页 |
3.5.3 SPF金定鸭鸭胚脐带来源干细胞系的建立 | 第24-26页 |
3.5.4 DPV(CSC株)在鸭胚脐带来源干细胞上的增殖特性 | 第26-28页 |
4 结果与分析 | 第28-46页 |
4.1 SPF金定鸭种群规模 | 第28-29页 |
4.2 SPF种群微生物学净化结果 | 第29-30页 |
4.3 种群遗传学检测结果 | 第30-35页 |
4.3.1 PCR扩增结果 | 第30-33页 |
4.3.2 等位基因及基因频率 | 第33页 |
4.3.3 杂合度、多态信息含量及有效等位基因数 | 第33-34页 |
4.3.4 Hardy-Weinberg平衡检验 | 第34-35页 |
4.4 SPF种群饲料学检测结果 | 第35页 |
4.5 SPF金定鸭对DHV-I和DPV的敏感性 | 第35-37页 |
4.5.1 SPF金定鸭对DHV-I的敏感性 | 第35-36页 |
4.5.2 SPF金定鸭对DPV的敏感性 | 第36-37页 |
4.6 DPV(CSC株)和DHV-I(161/79/v株)病毒滴度测定结果 | 第37页 |
4.7 SPF金定鸭鸭胚脐带来源干细胞系建立 | 第37-46页 |
4.7.1 鸭胚脐带来源干细胞的分离与培养 | 第37-38页 |
4.7.2 鸭胚脐带来源干细胞表面标志的IFA检测 | 第38-40页 |
4.7.3 鸭胚脐带来源的干细胞表面标志RT-PCR检测 | 第40页 |
4.7.4 鸭胚脐带来源的干细胞诱导分化 | 第40-42页 |
4.7.5 DPV(CSC株)在鸭胚脐带来源干细胞上增殖特性 | 第42-46页 |
5 讨论 | 第46-49页 |
5.1 SPF金定鸭种群微生物学特性分析 | 第46页 |
5.2 SPF金定鸭种群现状分析 | 第46-47页 |
5.3 SPF金定鸭应用 | 第47-48页 |
5.4 SPF金定鸭鸭胚的应用与展望 | 第48-49页 |
6 结论 | 第49-50页 |
致谢 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-57页 |
附录A | 第57-65页 |
附录B | 第65-66页 |
攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第66页 |