| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第10-28页 |
| 1.1 荧光生物传感器的简介 | 第10-16页 |
| 1.1.1 荧光产生的原理 | 第10-11页 |
| 1.1.2 荧光生物传感器的分类及特点 | 第11-16页 |
| 1.2 荧光信号放大策略 | 第16-26页 |
| 1.2.1 基于酶辅助的信号放大策略 | 第17-20页 |
| 1.2.2 基于DNA自组装的信号放大策略 | 第20-22页 |
| 1.2.3 基于纳米材料的信号放大策略 | 第22-26页 |
| 1.3 本文研究思路 | 第26-28页 |
| 第二章 基于滚环扩增辅助的免标记荧光生物传感器用于UDG的灵敏检测 | 第28-36页 |
| 2.1 前言 | 第28-29页 |
| 2.2 实验部分 | 第29-30页 |
| 2.2.1 试剂及材料 | 第29-30页 |
| 2.2.2 滚环扩增辅助的UDG活性检测 | 第30页 |
| 2.2.3 UDG抑制剂活性的检测 | 第30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-34页 |
| 2.3.1 UDG的检测原理图 | 第30-31页 |
| 2.3.2 UDG检测的可行性分析 | 第31-32页 |
| 2.3.3 UDG检测的性能研究 | 第32-33页 |
| 2.3.4 UDG检测的选择性研究 | 第33页 |
| 2.3.5 UDG抑制剂(UGI)的性能研究 | 第33-34页 |
| 2.4 结论 | 第34-36页 |
| 第三章 适配体临位识别引发的链迁移和CHA诱导的无酶放大策略进行凝血酶的检测 | 第36-44页 |
| 3.1 前言 | 第36-37页 |
| 3.2 实验部分 | 第37-38页 |
| 3.2.1 试剂和材料 | 第37页 |
| 3.2.2 凝血酶识别探针的制备 | 第37-38页 |
| 3.2.3 荧光放大法检测凝血酶 | 第38页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第38-43页 |
| 3.3.1 荧光放大法检测凝血酶的原理 | 第38-39页 |
| 3.3.2 Apt15的结构优化 | 第39-40页 |
| 3.3.3 检测凝血酶的可行性分析 | 第40-41页 |
| 3.3.4 反应时间的优化 | 第41页 |
| 3.3.5 该方法分析性能的研究 | 第41-42页 |
| 3.3.6 该方法选择性的研究 | 第42页 |
| 3.3.7 实际样品中凝血酶的检测 | 第42-43页 |
| 3.4 结论 | 第43-44页 |
| 第四章 可生物降解的二氧化锰(MnO_2)纳米片介导的HCR信号放大策略实现活细胞内低表达的MicroRNA的灵敏检测 | 第44-56页 |
| 4.1 前言 | 第44-46页 |
| 4.2 实验部分 | 第46-48页 |
| 4.2.1 材料及试剂 | 第46页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第46-47页 |
| 4.2.3 二氧化锰纳米片的合成与表征 | 第47页 |
| 4.2.4 荧光猝灭和恢复实验 | 第47页 |
| 4.2.5 HCR体外扩增的FRET检测 | 第47页 |
| 4.2.6 聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE) | 第47-48页 |
| 4.2.7 细胞培养和共聚焦荧光成像 | 第48页 |
| 4.2.8 HeLa细胞对miRNA-21抑制剂的孵育 | 第48页 |
| 4.2.9 细胞毒性测定 | 第48页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第48-55页 |
| 4.3.1 细胞内放大检测miRNA-21的原理图 | 第48-49页 |
| 4.3.2 MnO_2纳米片的表征 | 第49-50页 |
| 4.3.3 纳米片的荧光猝灭能力分析 | 第50页 |
| 4.3.4 传感器的可行性分析 | 第50-52页 |
| 4.3.5 纳米片对细胞活性的影响分析 | 第52-53页 |
| 4.3.6 细胞孵育不同时间的成像分析 | 第53页 |
| 4.3.7 细胞孵育不同探针的成像分析 | 第53-54页 |
| 4.3.8 不同细胞孵育不同探针的成像分析 | 第54-55页 |
| 4.4 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-70页 |
| 在学期间发表的文章 | 第70-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
