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J亚群禽白血病病毒与宿主细胞相互作用机制研究

中文摘要第3-6页
Abstract第6-8页
符号说明第13-15页
第一章 文献综述第15-35页
    综述一 禽白血病毒的研究进展第15-24页
        1 禽白血病毒简介第15-20页
        2 禽白血病毒的细胞受体第20-22页
        3 禽白血病毒导致免疫抑制第22-24页
    综述二 病毒感染与宿主抗病毒免疫研究进展第24-35页
        1 先天免疫在抗病毒反应过程中的作用第24-30页
        2 病毒逃逸先天免疫抗病毒反应的策略第30-32页
        3 禽类抗病毒免疫相关模式识别受体第32-35页
第二章 膜表面蛋白GRP78参与ALV-J入侵宿主细胞第35-47页
    2.1 材料与方法第36-42页
        2.1.1 细胞和病毒第36页
        2.1.2 主要试剂第36页
        2.1.3 主要试验仪器第36页
        2.1.4 主要试剂的配制第36-37页
        2.1.5 引物序列第37-38页
        2.1.6 Real-time PCR第38-39页
        2.1.7 TCID_(50)第39页
        2.1.8 IFA第39-40页
        2.1.9 Western-blot第40页
        2.1.10 鹅胚成纤维细胞(GEF)的制备第40-41页
        2.1.11 质粒转染第41页
        2.1.12 siRNA干扰试验第41页
        2.1.13 chGRP78转染HEK293T重建试验第41-42页
        2.1.14 chGRP78转染GEF重建试验第42页
    2.2 试验结果第42-46页
        2.2.1 多克隆抗体封闭细胞膜表面chGRP78抑制ALV-J的复制第42-43页
        2.2.2 siRNA干扰chGRP78的表达以抑制ALV-J的复制第43-44页
        2.2.3 非易感细胞重建试验第44-46页
    2.3 讨论第46-47页
第三章 Toll样受体在ALV-J复制中的作用第47-63页
    3.1 材料与方法第47-52页
        3.1.1 细胞和病毒第47页
        3.1.2 主要试剂第47-48页
        3.1.3 主要试验仪器第48页
        3.1.4 主要试剂的配制第48-49页
        3.1.5 引物序列第49页
        3.1.6 鸡胚成纤维细胞(CEF)的制备第49-50页
        3.1.7 ALV-J病毒的浓缩第50页
        3.1.8 细胞增殖和毒性试验第50-51页
        3.1.9 ALV-J感染前配体刺激第51页
        3.1.10 ALV-J感染后配体刺激第51页
        3.1.11 Real-time PCR检测配体刺激前后ALV-J mRNA水平表达情况第51页
        3.1.12 配体刺激前后细胞培养上清ALV-J TCID_(50)测定第51页
        3.1.13 IFA检测CEF细胞中ALV-J Env蛋白的表达第51页
        3.1.14 Western Blot分析CEF细胞中ALV-J Env蛋白的表达第51-52页
    3.2 试验结果第52-60页
        3.2.1 Toll样受体(TLR2、TLR3、TLR4、TLR5、TLR7和TLR21)相应配体细胞毒性检测第52-53页
        3.2.2 Toll样受体(TLR2、TLR3、TLR4、TLR5、TLR7和TLR21)相应配体在ALV-J感染前刺激CEF细胞时对病毒复制的影响第53-54页
        3.2.3 TLR2配体PGN-EB在ALV-J感染后不同时间点刺激CEF细胞时对病毒复制影响第54-55页
        3.2.4 TLR3配体poly(I:C)在ALV-J感染后不同时间点刺激CEF细胞时对病毒复制影响第55-56页
        3.2.5 TLR4配体LPS在ALV-J感染后不同时间点刺激CEF细胞时对病毒复制情况的检测第56-57页
        3.2.6 TLR5配体FLA-BS在ALV-J感染后不同时间点刺激CEF细胞时对病毒复制情况的检测第57-58页
        3.2.7 TLR7配体Imiquimod在ALV-J感染后不同时间点刺激CEF细胞时对病毒复制情况的检测第58-59页
        3.2.8 TLR21配体ODN(2006)在ALV-J感染后不同时间点刺激CEF细胞时对病毒复制情况的检测第59-60页
    3.3 讨论第60-63页
第四章 ALV-J感染宿主细胞CEF时激活非MyD88依赖途径第63-71页
    4.1 材料与方法第63-66页
        4.1.1 细胞和病毒第63页
        4.1.2 主要试剂第63页
        4.1.3 主要试验仪器第63-64页
        4.1.4 主要试剂的配制第64页
        4.1.5 引物序列第64-65页
        4.1.6 病毒感染试验第65页
        4.1.7 Real-time PCR方法检测病毒感染后细胞中Toll样通路中各因子的表达情况第65-66页
    4.2 试验结果第66-69页
        4.2.1 禽白血病毒感染宿主细胞后模式识别受体(Toll样受体和MDA5)的确定第66页
        4.2.2 禽白血病毒感染宿主细胞后参与MyD88依赖途径中相关因子检测第66-67页
        4.2.3 禽白血病毒感染宿主细胞后参与TLR3通路中相关因子第67-69页
    4.3 讨论第69-71页
第五章 鸡IRF3/7在ALV-J抗天然免疫中的作用第71-88页
    5.1 材料与方法第71-78页
        5.1.1 主要生物材料第71页
        5.1.2 主要试剂第71页
        5.1.3 主要试验仪器第71-72页
        5.1.4 主要试剂的配制第72页
        5.1.5 引物的设计和目的片段的扩增第72-73页
        5.1.6 目的片段的克隆第73-76页
        5.1.7 重组蛋白的诱导表达第76页
        5.1.8 小鼠多抗血清的制备第76-77页
        5.1.9 pcDNA3.1-chIRF3/7-rIgG和pcDNA3.1-rIgG真核表达质粒构建与鉴定第77页
        5.1.10 鸡IRF3/7过表达后对禽白血病毒复制的影响第77-78页
    5.2 试验结果第78-86页
        5.2.1 鸡IRF3/7的PCR扩增第78页
        5.2.2 pCold-TF-chIRF3/7原核表达载体的构建第78-79页
        5.2.3 重组蛋白的诱导表达第79-80页
        5.2.4 表达条件的优化第80页
        5.2.5 重组蛋白的鉴定第80-81页
        5.2.6 pcDNA3. 1-chIRF3/7-rIgG和pcDNA3.1-rIgG真核表达载体的构建第81-82页
        5.2.7 pcDNA3.1-chIRF3/7-rIgG和pcDNA3.1-rIgG真核表达的鉴定第82-83页
        5.2.8 鸡IRF3/7多抗血清的鉴定第83-84页
        5.2.9 过表达鸡IRF3/7对ALV-J复制的影响第84-85页
        5.2.10 过表达鸡IRF3/7能够上调宿主细胞IFN-β的表达第85-86页
    5.3 讨论第86-88页
第六章 ALV-J Env蛋白在抗天然免疫中作用初探第88-97页
    6.1 材料与方法第88-92页
        6.1.1 主要生物材料第88页
        6.1.2 主要试剂第88页
        6.1.3 主要试验仪器第88页
        6.1.4 引物序列第88-89页
        6.1.5 引物的设计和目的片段的扩增第89-90页
        6.1.6 目的片段的克隆第90页
        6.1.7 真核表达的鉴定第90页
        6.1.8 luciferase检测第90-91页
        6.1.9 Real-time PCR第91页
        6.1.10 统计分析和作图第91-92页
    6.2 试验结果第92-95页
        6.2.1 ALV-J Env基因片段的PCR扩增第92页
        6.2.2 pcDNA3.1-Env真核表达载体的构建第92-93页
        6.2.3 pcDNA3.1-Env真核表达的鉴定第93-94页
        6.2.4 过表达ALV-J Env蛋白对IFN-β表达的影响第94页
        6.2.5 过表达ALV-J Env蛋白对与Ⅰ型干扰素相关分子的影响第94-95页
    6.3 讨论第95-97页
全文总结第97-98页
论文的创新点第98-99页
文献引用第99-117页
致谢第117-118页
攻读博士学位期间发表的学术论文目录第118-119页

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