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拟南芥CIB3基因功能的研究

中文摘要第4-6页
Abstract第6-8页
第1章 文献综述第15-29页
    1.1 隐花色素的发现和分类第15-16页
    1.2 隐花色素的结构第16-17页
    1.3 隐花色素的功能第17-20页
        1.3.1 幼苗的去黄化作用第18页
        1.3.2 光周期控制的开花时间的调节第18-19页
        1.3.3 调节生物钟第19页
        1.3.4 光刺激下保卫细胞的发育和气孔的开放第19-20页
        1.3.5 其他可能的功能第20页
    1.4 隐花色素的光化学特性第20-22页
        1.4.1 蓝光依赖的隐花色素的磷酸化第21-22页
        1.4.2 蓝光依赖下CRY2的降解第22页
    1.5 隐花色素介导的蓝光信号传导第22-25页
        1.5.1 CRY2-CIBs信号通路第22-23页
        1.5.2 CRY-SPA1/COP1信号通路第23-25页
    1.6 bHLH家族第25-28页
        1.6.1 bHLH的结构第25页
        1.6.2 bHLH蛋白的功能第25-26页
        1.6.3 CIB1的发现与结构分析第26页
        1.6.4 CIB蛋白家族成员发现与功能第26-28页
    1.7 立题依据第28-29页
第2章 载体构建第29-40页
    2.1 载体信息第29-30页
    2.2 载体构建实验材料第30-31页
        2.2.1 基因序列第30页
        2.2.2 主要试剂第30-31页
        2.2.3 药品及培养基配制第31页
    2.3 实验方法第31-38页
        2.3.1 聚合酶链式反应(PCR)扩增目的基因第31-32页
        2.3.2 回收PCR产物第32-33页
        2.3.3 载体质粒提取第33-34页
        2.3.4 载体的酶切反应和线性化载体的回收第34页
        2.3.5 目的片段与载体的In-Fusion连接反应第34-35页
        2.3.6 重组质粒转化大肠杆菌第35页
        2.3.7 阳性克隆的鉴定第35-36页
        2.3.8 二次酶切第36-37页
        2.3.9 目的片段与载体的In-Fusion连接反应第37页
        2.3.10 重组质粒转化大肠杆菌第37页
        2.3.11 阳性克隆的鉴定第37-38页
    2.4 结果与分析第38-40页
        2.4.1 pDT7G-UBQ10::cGR-CRY2载体构建第38页
        2.4.2 pDT7G-ACT2::CIB3-MYC-UBQ10::cGR-CRY2载体构建第38-40页
第3章 CIB3和CRY2共表达的转基因拟南芥鉴定第40-48页
    3.1 实验材料第40-42页
        3.1.1 植物材料第40页
        3.1.2 实验仪器第40页
        3.1.3 实验菌种和载体第40页
        3.1.4 药品第40-41页
        3.1.5 免疫印迹实验所需溶剂及配制方法第41页
        3.1.6 其它第41-42页
    3.2 实验方法第42-45页
        3.2.1 农杆菌电击转化感受态细胞的制备第42页
        3.2.2 重组质粒转化农杆菌第42-43页
        3.2.3 农杆菌蘸花法侵染拟南芥第43-44页
            3.2.3.1 拟南芥种植第43页
            3.2.3.2 蘸花侵染拟南芥第43页
            3.2.3.3 Basta初步筛选第43-44页
        3.2.4 免疫印迹实验第44-45页
            3.2.4.1 SDS-PAGE凝胶配制第44-45页
            3.2.4.2 免疫印迹实验第45页
    3.3 结果与分析第45-48页
        3.3.1 转基因植物T3或T4代鉴定第45-48页
            3.3.1.1 (CIB3-CRY2)/rdr6转基因拟南芥T4代鉴定第46页
            3.3.1.2 (CIB3-CRY2)/cry2转基因植物鉴定结果第46-48页
第4章 CIB3和CRY2共表达的转基因拟南芥开花时间的表型鉴定第48-52页
    4.1 实验材料第48页
        4.1.1 植物材料第48页
        4.1.2 药品及配制方法第48页
    4.2 实验方法第48-49页
        4.2.1 播种第48-49页
        4.2.2 Dex与Mock处理方法第49页
        4.2.3 记录开花时间及叶片数第49页
    4.3 结果与分析第49-52页
        4.3.1 (CIB3-CRY2)/rdr6转基因拟南芥开花表型鉴定第49-50页
        4.3.2 (CIB3-CRY2)/cry2转基因拟南芥开花表型鉴定第50-52页
第5章 CIB3过表达转基因拟南芥中开花基因的mRNA表达变化第52-60页
    5.1 实验材料第52页
        5.1.1 植物材料第52页
        5.1.2 主要试剂第52页
        5.1.3 药品配制第52页
    5.2 实验方法第52-55页
        5.2.1 拟南芥幼苗的培养第52-53页
        5.2.2 植物总RNA的提取第53页
        5.2.3 cDNA第一链的合成第53-54页
        5.2.4 实时荧光定量PCR(Qpcr)第54-55页
        5.2.5 Qpcr引物第55页
    5.3 结果与分析第55-60页
        5.3.1 拟南芥总RNA提取的质量检测第55-56页
        5.3.2 CIB3促进FT mRNA的表达第56-58页
        5.3.3 CIB3抑制FLC mRNA的表达第58-60页
第6章 CIB3与CRY2蛋白相互作用的验证第60-71页
    6.1 酵母双杂交实验验证CIB3与CRY2蛋白相互作用第60-65页
        6.1.1 实验材料第60-62页
            6.1.1.1 实验菌株、载体第60页
            6.1.1.2 主要仪器第60-61页
            6.1.1.3 主要试剂及培养基配制第61-62页
        6.1.2 实验方法第62-64页
            6.1.2.1 PCR扩增反应引物设计第62页
            6.1.2.2 酵母转化第62-64页
        6.1.3 结果与分析第64-65页
    6.2 人胚肾细胞(HEK293T)表达植物蛋白及Co-IP实验验证CIB3与CRY2蛋白相互作用第65-71页
        6.2.1 实验材料第65-67页
            6.2.1.1 细胞材料第65页
            6.2.1.2 主要仪器第65-66页
            6.2.1.3 主要试剂及培养基配置第66-67页
            6.2.1.4 引物第67页
            6.2.1.5 载体第67页
        6.2.2 实验方法第67-69页
            6.2.2.1 HEK293T细胞的复苏第67页
            6.2.2.2 HEK293T细胞的继代培养和铺板第67-68页
            6.2.2.3 磷酸钙法转染HEK293T细胞第68页
            6.2.2.4 细胞收集及裂解第68页
            6.2.2.5 免疫共沉淀实验(Co-IP)第68-69页
        6.2.3 结果与分析第69-71页
第7章 结论与讨论第71-74页
    7.1 结论第71-72页
    7.2 讨论第72-74页
参考文献第74-81页
作者简介第81-82页
致谢第82页

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