| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 1 绪论 | 第11-17页 |
| 1.1 赤藓糖醇概述 | 第11页 |
| 1.1.1 赤藓糖醇的结构和理化性质 | 第11页 |
| 1.1.2 赤藓糖醇的功能与作用 | 第11页 |
| 1.2 L-赤藓酮糖概述 | 第11-13页 |
| 1.2.1 L-赤藓酮糖的结构和理化性质 | 第11-12页 |
| 1.2.2 L-赤藓酮糖的功能与作用 | 第12-13页 |
| 1.2.3 L-赤藓酮糖的合成方法 | 第13页 |
| 1.3 L-赤藓酮糖的市场概况 | 第13页 |
| 1.4 L-赤藓酮糖的研究进展 | 第13-14页 |
| 1.5 本课题的研究意义 | 第14-15页 |
| 1.6 本课题的主要研究内容 | 第15-17页 |
| 1.6.1 微生物发酵法生产 | 第15页 |
| 1.6.2 静息细胞转化技术 | 第15页 |
| 1.6.3 L-赤藓酮糖的分离提取 | 第15-17页 |
| 2 赤藓糖醇以及L-赤藓酮糖检测方法的建立 | 第17-27页 |
| 2.1 紫外分光光度测定L-赤藓酮糖浓度以及条件优化 | 第17-21页 |
| 2.1.1 引言 | 第17页 |
| 2.1.2 材料与方法 | 第17-18页 |
| 2.1.3 实验方法 | 第18页 |
| 2.1.4 实验结果 | 第18-21页 |
| 2.1.5 结论 | 第21页 |
| 2.2 离子排斥色谱法同时检测赤藓糖醇和L-赤藓酮糖浓度以及条件优化 | 第21-27页 |
| 2.2.1 引言 | 第21页 |
| 2.2.2 材料与方法 | 第21页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第21-22页 |
| 2.2.4 实验结果 | 第22-25页 |
| 2.2.5 结论 | 第25-27页 |
| 3 L-赤藓酮糖发酵工艺条件优化 | 第27-35页 |
| 3.1 引言 | 第27页 |
| 3.2 实验材料 | 第27-28页 |
| 3.2.1 主要仪器与试剂 | 第27-28页 |
| 3.2.2 实验菌种 | 第28页 |
| 3.2.3 培养基 | 第28页 |
| 3.3 实验方法 | 第28-29页 |
| 3.3.1 摇瓶发酵条件优化 | 第28页 |
| 3.3.2 kLa对发酵调控的影响 | 第28-29页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第29-34页 |
| 3.4.1 摇瓶发酵条件优化结果 | 第29-30页 |
| 3.4.2 kLa对发酵调控的影响 | 第30-34页 |
| 3.5 本章总结 | 第34-35页 |
| 4 静息细胞转化赤藓糖醇生产L-赤藓酮糖 | 第35-43页 |
| 4.1 引言 | 第35页 |
| 4.2 实验材料与方法 | 第35-36页 |
| 4.2.1 主要仪器与试剂 | 第35页 |
| 4.2.2 菌种 | 第35页 |
| 4.2.3 菌体培养 | 第35页 |
| 4.2.4 发酵液中菌体细胞浓度的测定 | 第35-36页 |
| 4.2.5 催化氧化赤藓糖醇生产L-赤藓酮糖 | 第36页 |
| 4.3 实验方法 | 第36页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第36-42页 |
| 4.4.1 静息细胞转化条件单因素实验结果 | 第36-38页 |
| 4.4.2 根据Plackett-Burman实验结果筛选主要因素 | 第38-39页 |
| 4.4.3 响应面分析法优化静息细胞转化条件 | 第39-41页 |
| 4.4.4 培养批次对静息细胞重复利用稳定性的研究 | 第41-42页 |
| 4.5 本章总结 | 第42-43页 |
| 5 L-赤藓酮糖的分离提取工艺条件研究 | 第43-49页 |
| 5.1 引言 | 第43页 |
| 5.2 材料与方法 | 第43-44页 |
| 5.2.1 试剂与材料 | 第43页 |
| 5.2.2 主要仪器 | 第43-44页 |
| 5.2.3 实验方法 | 第44页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第44-48页 |
| 5.3.1 菌体去除实验 | 第44-45页 |
| 5.3.2 蛋白去除实验 | 第45页 |
| 5.3.3 阴阳离子交换树脂脱盐实验 | 第45-46页 |
| 5.3.4 L-赤藓酮糖脱色实验 | 第46-47页 |
| 5.3.5 L-赤藓酮糖浓缩实验 | 第47页 |
| 5.3.6 L-赤藓酮糖纯品质量分析 | 第47-48页 |
| 5.4 本章总结 | 第48-49页 |
| 6 讨论 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-55页 |
| 攻读学位期间发表的学术成果 | 第55-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
