| 摘要 | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-18页 |
| 1 昆虫的嗅觉感器 | 第9-10页 |
| 2 昆虫嗅觉相关蛋白 | 第10-14页 |
| 2.1 气味结合蛋白OBPs | 第11页 |
| 2.2 化学感受蛋白CSPs | 第11-12页 |
| 2.3 神经元膜蛋白SNMPs | 第12页 |
| 2.4 气味降解酶ODEs | 第12-13页 |
| 2.5 气味受体ORs | 第13-14页 |
| 3 嗅觉信号转导途径 | 第14-16页 |
| 4 本研究的目的与意义 | 第16-18页 |
| 第二章 AcerOrl和AcerOrco mRNA在中蜂各组织的表达研究 | 第18-29页 |
| 1 试验材料与方法 | 第18-22页 |
| 1.1 试验材料 | 第18-19页 |
| 1.1.1 试验样本采集 | 第18页 |
| 1.1.2 试验仪器 | 第18-19页 |
| 1.1.3 试验试剂 | 第19页 |
| 1.2 试验方法 | 第19-22页 |
| 1.2.1 溶液的配置 | 第19页 |
| 1.2.2 总RNA的提取及检测 | 第19-20页 |
| 1.2.3 反转录 | 第20页 |
| 1.2.4 引物设计 | 第20-21页 |
| 1.2.5 反应条件的优化 | 第21页 |
| 1.2.6 标准曲线的建立 | 第21页 |
| 1.2.7 AcerOrl、AcerOrco的相对定量分析 | 第21页 |
| 1.2.8 数据处理与分析 | 第21-22页 |
| 2 结果与分析 | 第22-27页 |
| 2.1 总RNA提取及检测 | 第22页 |
| 2.2 标准曲线的建立 | 第22-23页 |
| 2.3 样品扩增动力学曲线及熔解曲线 | 第23-25页 |
| 2.4 内勤蜂和采集蜂AcerOrl的表达特点 | 第25-26页 |
| 2.5 内勤蜂和采集蜂AcerOrco的表达特点 | 第26-27页 |
| 3. 讨论 | 第27-28页 |
| 4. 小结 | 第28-29页 |
| 第三章 AcerOrl和AcerOrco受体蛋白在中蜂各组织的表达研究 | 第29-39页 |
| 1 材料与方法 | 第29-34页 |
| 1.1 试验样本采集 | 第29页 |
| 1.2 试验仪器及试剂 | 第29-31页 |
| 1.2.1 试验仪器 | 第29-30页 |
| 1.2.2 试验试剂及配方 | 第30-31页 |
| 1.3 试验方法 | 第31-34页 |
| 1.3.1 多克隆抗体的制备 | 第31-32页 |
| 1.3.2 组织蛋白样品的制备 | 第32页 |
| 1.3.3 蛋白含量的测定 | 第32页 |
| 1.3.4 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第32-33页 |
| 1.3.5 转膜 | 第33页 |
| 1.3.6 免疫反应 | 第33-34页 |
| 1.3.7 ECL化学发光检测 | 第34页 |
| 2 结果与分析 | 第34-37页 |
| 2.1 多克隆抗体检测结果 | 第34-35页 |
| 2.2 蛋白提取效果的检测 | 第35-36页 |
| 2.3 western-blot结果及分析 | 第36-37页 |
| 2.3.1 AcerOrl在内勤蜂和采集蜂各组织中蛋白的相对表达分析 | 第36页 |
| 2.3.2 AcerOrco在内勤蜂和采集蜂各组织中蛋白的相对表达分析 | 第36-37页 |
| 3 讨论 | 第37-38页 |
| 4 小结 | 第38-39页 |
| 第四章 AcerOrl、AcerOrco在中蜂触角中的表达定位 | 第39-45页 |
| 1 试验材料与方法 | 第39-41页 |
| 1.1 试验材料 | 第39-40页 |
| 1.1.1 试验样本采集 | 第39页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第39页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第39-40页 |
| 1.2 试验方法 | 第40-41页 |
| 1.2.1 主要溶液的配置 | 第40页 |
| 1.2.2 试验步骤 | 第40-41页 |
| 2 结果与分析 | 第41-43页 |
| 3 讨论 | 第43-44页 |
| 4 小结 | 第44-45页 |
| 全文结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-52页 |
| Abstract | 第52页 |
| 致谢 | 第54页 |
