| 中文摘要 | 第11-12页 |
| ABSTRACT | 第12-13页 |
| 第一章 引言 | 第14-22页 |
| 1 文献综述 | 第14-20页 |
| 1.1 盐胁迫对植物影响 | 第15-16页 |
| 1.2 响应植物盐胁迫的信号途径 | 第16-18页 |
| 1.3 植物耐盐机制 | 第18-20页 |
| 1.4 合成生物学的研究进展 | 第20页 |
| 2 本文的研究内容 | 第20-21页 |
| 3 论文的选题意义 | 第21-22页 |
| 第二章 设计组装合成亲水短肽基因及其功能初步鉴定 | 第22-40页 |
| 1 材料 | 第22-24页 |
| 1.1 试验材料 | 第22页 |
| 1.2 主要药品与试剂 | 第22-24页 |
| 1.3 主要仪器和设备 | 第24页 |
| 2 方法 | 第24-31页 |
| 2.1 NLEAs蛋白的设计及组装 | 第24-25页 |
| 2.2 酵母表达载体pYES2-NLEAs的构建 | 第25-29页 |
| 2.3 酵母转化子的筛选 | 第29-30页 |
| 2.4 转NLEAs基因酵母功能的验证 | 第30-31页 |
| 3 结果与分析 | 第31-38页 |
| 3.1 NLEAs基因的设计及合成 | 第31-34页 |
| 3.2 酵母表达载体pYES2-NLEA的构建 | 第34-36页 |
| 3.3 转NLEA基因提高酵母的耐盐能力 | 第36-38页 |
| 4 讨论 | 第38-40页 |
| 第三章 植物表达载体构建及功能验证 | 第40-60页 |
| 1 材料 | 第40-42页 |
| 1.1 试验材料 | 第40页 |
| 1.2 主要药品与试剂的配制 | 第40-42页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第42页 |
| 2 试验方法 | 第42-49页 |
| 2.1 植物的种植 | 第42页 |
| 2.2 pGWB14-NLEA1表达载体的构建 | 第42-45页 |
| 2.3 农杆菌介导法转化拟南芥 | 第45-46页 |
| 2.4 转基因拟南芥植株的筛选 | 第46-47页 |
| 2.5 盐胁迫处理 | 第47页 |
| 2.6 双T-DNA植物表达pWMB122-WNLEA1的构建 | 第47-48页 |
| 2.7 农杆菌介导法转化小麦 | 第48-49页 |
| 2.8 转基因小麦叶片离体盐胁迫处理 | 第49页 |
| 3 结果与分析 | 第49-58页 |
| 3.1 表达载体pGWB14-NLEA1的构建 | 第49-52页 |
| 3.2 转基因拟南芥植株的鉴定 | 第52-53页 |
| 3.3 转NLEA1拟南芥株系抗性鉴定 | 第53-55页 |
| 3.4 构建表达载体pWMB122-WNLEA | 第55-57页 |
| 3.5 转基因小麦的鉴定以及离体叶片耐盐性分析 | 第57-58页 |
| 4 讨论 | 第58-60页 |
| 4.1 pGWB14-NLEA1表达载体特点 | 第58页 |
| 4.2 转基因株系阳性鉴定及抗性筛选 | 第58-59页 |
| 4.3 pWMB122-WNLEA1载体的特点 | 第59-60页 |
| 第四章 NLEA1基因的耐盐机制 | 第60-72页 |
| 1 试验材料 | 第60-61页 |
| 1.1 植物材料 | 第60页 |
| 1.2 主要药品与试剂的配制 | 第60页 |
| 1.3 主要仪器和设备 | 第60-61页 |
| 2 方法 | 第61-63页 |
| 2.1 野生型拟南芥的种植方法 | 第61页 |
| 2.2 ABA含量的测定 | 第61-62页 |
| 2.3 ROS含量的测定 | 第62-63页 |
| 2.4 转录组测序方法 | 第63页 |
| 3 结果与分析 | 第63-68页 |
| 3.1 转基因植株的ABA含量 | 第63-64页 |
| 3.2 NLEA1促进活性氧清除基因的表达 | 第64-65页 |
| 3.3 转基因植株的转录组分析 | 第65-68页 |
| 4 讨论 | 第68-72页 |
| 4.1 NLEA1转基因拟南芥对盐胁迫的应答反应 | 第68-69页 |
| 4.2 NLEA1转基因拟南芥耐盐胁迫的机制 | 第69-72页 |
| 第五章 结论 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
| 攻读硕士学位论文期间发表的论文 | 第87页 |