| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 第一章 绪论 | 第8-31页 |
| 1.1 引言 | 第8-9页 |
| 1.2 非病毒载体 | 第9-22页 |
| 1.2.1 阳离子脂质体 | 第9-11页 |
| 1.2.2 阳离子聚合物 | 第11-15页 |
| 1.2.3 多功能纳米载体 | 第15-18页 |
| 1.2.4 阳离子载体介导的基因转染需要克服的主要障碍 | 第18-22页 |
| 1.3 碳点 | 第22-29页 |
| 1.3.1 碳点的性质 | 第23-25页 |
| 1.3.2 碳点的制备 | 第25-26页 |
| 1.3.3 碳点的生物医学应用 | 第26-29页 |
| 1.4 论文工作的提出 | 第29-31页 |
| 第二章 CD-PDMA-PMPD聚合物的合成与表征 | 第31-48页 |
| 2.1 实验部分 | 第31-36页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第31-32页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第32页 |
| 2.1.3 材料的制备 | 第32-34页 |
| 2.1.4 材料的表征 | 第34-36页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第36-47页 |
| 2.2.1 形貌、尺寸和相结构分析 | 第36-38页 |
| 2.2.2 化学组成和结构分析 | 第38-42页 |
| 2.2.3 CD-PDMA-PMPD分子量的计算 | 第42-44页 |
| 2.2.4 荧光性能分析 | 第44-47页 |
| 2.3 本章小结 | 第47-48页 |
| 第三章 CD-PDMA-PMPD与质粒DNA相互作用研究 | 第48-58页 |
| 3.1 实验部分 | 第48-52页 |
| 3.1.1 试剂耗材 | 第48-49页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第49-50页 |
| 3.1.3 菌体的培养和质粒DNA（pDNA）的提取 | 第50-51页 |
| 3.1.4 CD-聚合物/pDNA复合物的制备 | 第51页 |
| 3.1.5 琼脂糖凝胶电泳 | 第51-52页 |
| 3.1.6 透射电镜（TEM） | 第52页 |
| 3.1.7 Zeta电位检测和粒度分析 | 第52页 |
| 3.1.8 复合物抗酶解能力测试 | 第52页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第52-57页 |
| 3.2.1 琼脂糖凝胶电泳分析 | 第52-54页 |
| 3.2.2 复合物形貌和尺寸分析 | 第54页 |
| 3.2.3 Zeta电位和水合粒径分析 | 第54-55页 |
| 3.2.4 复合物抗酶解能力分析 | 第55-57页 |
| 3.3 本章小结 | 第57-58页 |
| 第四章 CD-PDMA-PMPD介导的体外抗血清基因转染、细胞毒性及细胞成像性能研究 | 第58-76页 |
| 4.1 实验部分 | 第58-65页 |
| 4.1.1 试剂耗材 | 第58-59页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第59-60页 |
| 4.1.3 载体抗蛋白吸附能力评估 | 第60-61页 |
| 4.1.4 载体血液相容性测定 | 第61-62页 |
| 4.1.5 载体体外转染效率的测定 | 第62-63页 |
| 4.1.6 复合物细胞内吞效率的测定 | 第63-64页 |
| 4.1.7 MTT法考察细胞毒性 | 第64页 |
| 4.1.8 CD-PDMA-PMPD的细胞荧光成像实验 | 第64-65页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第65-75页 |
| 4.2.1 抗蛋白吸附能力分析 | 第65-66页 |
| 4.2.2 血液相容性分析 | 第66-68页 |
| 4.2.3 体外转染效率分析 | 第68-71页 |
| 4.2.4 复合物细胞内吞效率研究 | 第71-73页 |
| 4.2.5 复合物的细胞毒性研究 | 第73-74页 |
| 4.2.6 荧光成像性能分析 | 第74-75页 |
| 4.3 本章小结 | 第75-76页 |
| 第五章 全文结论 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-85页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86-88页 |
