| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第10-22页 |
| 1.1 引言 | 第10页 |
| 1.2 海月水母生活史 | 第10-14页 |
| 1.2.1 海月水母成体 | 第11-12页 |
| 1.2.2 螅状幼体 | 第12-13页 |
| 1.2.3 碟状幼体 | 第13-14页 |
| 1.3 管花萨氏水母生活史 | 第14-15页 |
| 1.4 水母食性检测的鉴定方法 | 第15-19页 |
| 1.4.1 直接镜检分析法 | 第15-16页 |
| 1.4.2 肠道色素法 | 第16-17页 |
| 1.4.3 脂肪酸标记法 | 第17-18页 |
| 1.4.4 同位素标记法 | 第18页 |
| 1.4.5 高通量测序技术 | 第18-19页 |
| 1.5 水母类的摄食行为研究进展 | 第19-20页 |
| 1.5.1 国内水母类摄食行为研究进展 | 第19-20页 |
| 1.5.2 国外水母类摄食行为研究进展 | 第20页 |
| 1.6 研究内容意义 | 第20-22页 |
| 1.6.1 研究内容 | 第20-21页 |
| 1.6.2 研究意义 | 第21-22页 |
| 2 海月水母成熟个体现场食物研究 | 第22-28页 |
| 2.1 材料与设备 | 第22页 |
| 2.1.1 样品采集与保存 | 第22页 |
| 2.1.2 实验试剂及制备方法 | 第22页 |
| 2.1.3 仪器设备 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-23页 |
| 2.2.1 水母摄食种类鉴定方法-直接镜检法 | 第22-23页 |
| 2.2.2 浮游动物的鉴定-体视显微镜鉴定 | 第23页 |
| 2.2.3 数据处理方法 | 第23页 |
| 2.3 实验结果 | 第23-26页 |
| 2.3.1 野外采集100只成体海月水母直径分析 | 第23-24页 |
| 2.3.2 浮游动物种类与优势度 | 第24-25页 |
| 2.3.3 成体海月水母的摄食组成 | 第25-26页 |
| 2.4 分析与讨论 | 第26-28页 |
| 3 海月水母螅状幼体和碟状幼体现场食物研究 | 第28-48页 |
| 3.1 材料与设备 | 第28-29页 |
| 3.1.1 样品采集与保存 | 第28页 |
| 3.1.2 实验试剂及制备方法 | 第28-29页 |
| 3.1.3 仪器设备 | 第29页 |
| 3.2 实验方法 | 第29-33页 |
| 3.2.1 样品DNA提取 | 第29-30页 |
| 3.2.2 琼脂糖凝胶电泳 | 第30-31页 |
| 3.2.3 PCR分析 | 第31-32页 |
| 3.2.4 高通量测序 | 第32页 |
| 3.2.5 数据的处理与分析 | 第32-33页 |
| 3.3 结果 | 第33-44页 |
| 3.3.1 基因组DNA提取 | 第33-34页 |
| 3.3.2 PCR扩增 | 第34-35页 |
| 3.3.3 测序结果 | 第35-44页 |
| 3.4 分析与讨论 | 第44-48页 |
| 3.4.1 DNA提取样品的保存 | 第44-45页 |
| 3.4.2 海月水母螅状幼体和碟状幼体现场食物摄食种类具有多样性 | 第45-46页 |
| 3.4.3 海月水母螅状幼体和碟状幼体现场食物摄食种类具有差异性 | 第46-48页 |
| 4 管花萨氏水母现场食物研究 | 第48-52页 |
| 4.1 材料与设备 | 第48页 |
| 4.1.1 样品采集与保存 | 第48页 |
| 4.1.2 实验试剂及制备方法 | 第48页 |
| 4.1.3 仪器设备 | 第48页 |
| 4.2 实验方法 | 第48-49页 |
| 4.2.1 样品DNA提取 | 第48页 |
| 4.2.2 琼脂糖凝胶电泳 | 第48页 |
| 4.2.3 PCR | 第48-49页 |
| 4.2.4 高通量测序 | 第49页 |
| 4.2.5 数据处理分析 | 第49页 |
| 4.3 结果 | 第49-51页 |
| 4.3.1 基因组DNA提取 | 第49-50页 |
| 4.3.2 PCR扩增 | 第50页 |
| 4.3.3 测序结果 | 第50-51页 |
| 4.4 分析与讨论 | 第51-52页 |
| 5 结论及展望 | 第52-55页 |
| 5.1 结论 | 第52-53页 |
| 5.2 创新性 | 第53页 |
| 5.3 研究展望 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 附录1 攻读学位期间发表的学术论文及研究成果 | 第65-66页 |