| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-20页 |
| 1.1 柑橘产业现状 | 第10-11页 |
| 1.2 橙汁加工业现状 | 第11页 |
| 1.3 我国橙汁加工业面临的难题 | 第11-13页 |
| 1.3.1 橙汁加工用果实的品质要求 | 第11-12页 |
| 1.3.2 橙汁加工中的“延迟苦味”现象 | 第12-13页 |
| 1.4 橙汁脱苦技术研究进展 | 第13-14页 |
| 1.4.1 物理化学脱苦工艺 | 第13-14页 |
| 1.4.2 基因工程脱苦 | 第14页 |
| 1.5 柠檬苦素类似物糖基转移酶基因(citLGT)的研究进展 | 第14-15页 |
| 1.6 外源基因在植物体内的表达调控 | 第15-20页 |
| 1.6.1 提高外源基因在植物体内表达的策略 | 第15-17页 |
| 1.6.2 降低或抑制基因表达的方式 | 第17-20页 |
| 第二章 引言 | 第20-24页 |
| 2.1 研究的目的与意义 | 第20-22页 |
| 2.2 主要技术路线图 | 第22-24页 |
| 第三章 材料和方法 | 第24-42页 |
| 3.1 材料、仪器与试剂 | 第24-28页 |
| 3.1.1 载体、菌株、材料 | 第24页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第24-25页 |
| 3.1.3 试剂 | 第25页 |
| 3.1.4 溶液 | 第25-27页 |
| 3.1.5 培养基 | 第27-28页 |
| 3.2 实验方法 | 第28-42页 |
| 3.2.1 目的基因的获得 | 第28-29页 |
| 3.2.2 超量表达载体p35S：citLGT的构建 | 第29-30页 |
| 3.2.3 RNA干扰表达载体的构建 | 第30-31页 |
| 3.2.4 只含有intron的p35S：intron载体的构建 | 第31页 |
| 3.2.5 相关植物表达载体转化农杆菌 | 第31-32页 |
| 3.2.6 农杆菌介导的锦橙上胚轴的遗传转化 | 第32-33页 |
| 3.2.7 转基因植株的检测 | 第33-35页 |
| 3.2.8 GUS基因在转基因锦橙叶片基因组中的整合分析 | 第35-39页 |
| 3.2.9 citLGT基因在转基因锦橙叶片中的表达分析 | 第39-42页 |
| 第四章 结果与分析 | 第42-62页 |
| 4.1 相关目的基因的克隆 | 第42-43页 |
| 4.2 相关植物表达载体的构建 | 第43-51页 |
| 4.2.1 超量表达载体p35S：citLGT的构建 | 第43-45页 |
| 4.2.2 RNA干扰表达载体的构建 | 第45-49页 |
| 4.2.3 p35S：intron载体的构建 | 第49-51页 |
| 4.3 农杆菌介导的锦橙上胚轴的遗传转化 | 第51-56页 |
| 4.3.1 转基因植株的获得 | 第51-52页 |
| 4.3.2 转基因植株叶片的GUS染色 | 第52-53页 |
| 4.3.3 GUS阳性转基因植株PCR检测 | 第53-56页 |
| 4.4 转基因植株中GUS基因的Southern杂交分析结果 | 第56-58页 |
| 4.5 转基因锦橙叶片中citLGT基因的荧光定量分析结果 | 第58-62页 |
| 第五章 讨论 | 第62-64页 |
| 第六章 结论 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-72页 |
| 附录 | 第72-76页 |
| 缩略词表 | 第72-73页 |
| 荧光定量PCR扩增曲线图 | 第73-76页 |
| 致谢 | 第76-78页 |
| 发表文章及参与项目 | 第78页 |
