摘要 | 第4-6页 |
Summary | 第6-7页 |
第一章 文献综述 | 第11-22页 |
1 藏绵羊概述 | 第11页 |
2 藏绵羊低氧适应研究进展 | 第11-13页 |
3 EGLN1基因高原低氧适应研究进展 | 第13-16页 |
3.1 脯氨酸羟化酶 | 第13-14页 |
3.2 EGLN1基因低氧适应研究 | 第14-16页 |
3.2.1 EGLN1基因结构与调控机制 | 第14-15页 |
3.2.2 EGLN1基因的多态性及表达研究 | 第15-16页 |
4 PPARA基因低氧适应性研究进展 | 第16-21页 |
4.1 PPARs基因的研究进展 | 第16-18页 |
4.1.1 PPARs概述 | 第16页 |
4.1.2 PPARs的结构与分类 | 第16-17页 |
4.1.3 PPARs的作用机理 | 第17-18页 |
4.2 PPARA基因研究进展 | 第18-21页 |
4.2.1 PPARA基因 | 第18页 |
4.2.2 PPARA基因的生物学作用 | 第18-19页 |
4.2.3 PPARA基因多态性及组织表达 | 第19-20页 |
4.2.4 PPARA基因与高原低氧适应的研究进展 | 第20-21页 |
5 本研究的目的和意义 | 第21-22页 |
第二章 材料与方法 | 第22-33页 |
1 试验材料 | 第22-24页 |
1.1 样品采集 | 第22页 |
1.1.1 血样采集 | 第22页 |
1.1.2 组织样采集 | 第22页 |
1.2 试验主要试剂和仪器设备 | 第22-23页 |
1.2.1 主要成品试剂 | 第22-23页 |
1.2.2 主要自配溶液 | 第23页 |
1.3 主要仪器设备 | 第23-24页 |
2 试验方法 | 第24-30页 |
2.1 EGLN1、PPARA基因遗传特征研究 | 第24-27页 |
2.1.1 基因组DNA提取 | 第24-25页 |
2.1.2 EGLN1、PPARA基因引物设计与扩增 | 第25-26页 |
2.1.3 EGLN1、PPARA基因的SSCP检测 | 第26-27页 |
2.2 EGLN1、PPARA基因实时荧光定量分析 | 第27-30页 |
2.2.1 RNA提取和检测 | 第27-28页 |
2.2.2 RNA质量检测 | 第28-29页 |
2.2.3 cDNA合成 | 第29-30页 |
2.2.4 荧光定量PCR引物设计与扩增 | 第30页 |
3 数据统计分析 | 第30-33页 |
3.1 统计分析 | 第31-32页 |
3.1.1 基因型频率和等位基因频率 | 第31页 |
3.1.2 纯合度和杂合度 | 第31-32页 |
3.1.3 有效等位基因数 | 第32页 |
3.1.4 多态信息含量 | 第32页 |
3.2 表达分析 | 第32-33页 |
第三章 结果与分析 | 第33-48页 |
1 绵羊EGLN1和PPARA基因的PCR扩增产物检测 | 第33-34页 |
1.1 绵羊EGLN1基因PCR扩增产物检测 | 第33页 |
1.2 绵羊PPARA基因PCR扩增产物检测 | 第33-34页 |
2 绵羊EGLN1和PPARA基因的SSCP检测结果 | 第34-35页 |
2.1 EGLN1基因的SSCP检测 | 第34-35页 |
2.2 PPARA基因SSCP检测 | 第35页 |
3 绵羊EGLN1和PPARA基因等位基因序列比对 | 第35-39页 |
3.1 EGLN1基因等位基因序列比对 | 第35-37页 |
3.1.1 EGLN1基因第3内含子扩增区等位基因序列比对 | 第35-36页 |
3.1.2 EGLN1基因第6内含子扩增区等位基因序列比对 | 第36页 |
3.1.3 EGLN1基因第5内含子-第6内含子扩增区等位基因序列比对 | 第36-37页 |
3.2 PPARA基因等位基因序列比对 | 第37-39页 |
3.2.1 PPARA基因第3内含子-第4内含子扩增区等位基因序列比对 | 第37-38页 |
3.2.2 PPARA基因第5外显子扩增区等位基因序列比对 | 第38-39页 |
4 绵羊EGLN1和PPARA基因多态性分析 | 第39-42页 |
4.1 EGLN1基因多态性分析 | 第39-41页 |
4.1.1 EGLN1基因第3内含子扩增区多态性分析 | 第39页 |
4.1.2 EGLN1基因第6内含子引物扩增区多态性分析 | 第39-40页 |
4.1.3 EGLN1基因第5内含子-第6内含子扩增区多态性分析 | 第40-41页 |
4.2 绵羊PPARA基因多态性分析 | 第41-42页 |
4.2.1 PPARA基因第3内含子-第4内含子扩增区域多态性分析 | 第41-42页 |
4.2.2 PPARA基因第5外显子扩增区多态性分析 | 第42页 |
5 绵羊EGLN1和PPARA基因组织表达分析 | 第42-48页 |
5.1 EGLN1基因组织表达分析 | 第42-45页 |
5.1.1 RNA的琼脂糖电泳检测 | 第42-43页 |
5.1.2 目的基因PCR扩增产物的琼脂糖电泳检测 | 第43页 |
5.1.3 qRT-PCR熔解曲线和扩增曲线 | 第43-44页 |
5.1.4 两个绵羊品种EGLN1基因表达结果 | 第44-45页 |
5.2 绵羊PPARA基因组织表达分析 | 第45-48页 |
5.2.1 RNA的琼脂糖检测 | 第45页 |
5.2.2 目的基因PCR扩增产物的琼脂糖电泳检测 | 第45-46页 |
5.2.3 qRT-PCR熔解曲线和扩增曲线 | 第46页 |
5.2.4 两个绵羊品种PPARA基因表达结果 | 第46-48页 |
第四章 讨论 | 第48-52页 |
1 EGLN1基因 | 第48-50页 |
1.1 EGLN1基因多态性分析 | 第48-49页 |
1.2 EGLN1基因组织表达差异 | 第49-50页 |
2 PPARA基因 | 第50-52页 |
2.1 PPARA基因多态性分析 | 第50页 |
2.2 PPARA基因组织表达差异 | 第50-52页 |
第五章 结论 | 第52-53页 |
参考文献 | 第53-62页 |
致谢 | 第62-63页 |
作者简介 | 第63-64页 |
导师简介 | 第64-65页 |