| 摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 第一章 柘树抗肿瘤活性成分的分离与纯化 | 第15-26页 |
| 1 化合物的分离纯化 | 第15-17页 |
| 1.1 仪器和材料 | 第15-16页 |
| 1.1.1 仪器 | 第15页 |
| 1.1.2 材料及试剂 | 第15-16页 |
| 1.1.3 植物材料 | 第16页 |
| 1.2 提取分离 | 第16-17页 |
| 1.3 新化合物理化常数和波谱数据 | 第17页 |
| 2 新化合物结构的解析 | 第17-19页 |
| 3 化合物的纯度分析 | 第19-23页 |
| 3.1 薄层色谱法 | 第20-21页 |
| 3.1.1 仪器 | 第20页 |
| 3.1.2 材料与试剂 | 第20页 |
| 3.1.3 显色剂的配制 | 第20页 |
| 3.1.4 供试品溶液的制备 | 第20页 |
| 3.1.5 色谱条件 | 第20页 |
| 3.1.6 结果 | 第20-21页 |
| 3.2 高效液相色谱法 | 第21-22页 |
| 3.2.1 仪器与试药 | 第21页 |
| 3.2.2 色谱条件 | 第21页 |
| 3.2.3 结果 | 第21-22页 |
| 3.3 讨论 | 第22-23页 |
| 4 细胞毒活性研究 | 第23页 |
| 本章小结 | 第23-25页 |
| 参考文献 | 第25-26页 |
| 第二章 柘树抗肿瘤活性成分在大鼠体内的药代动力学研究 | 第26-48页 |
| 第一节 柘树(?)酮乙在大鼠体内的药代动力学研究 | 第26-37页 |
| 1 实验方法 | 第26-28页 |
| 1.1 材料与仪器 | 第26页 |
| 1.1.1 药品和试剂 | 第26页 |
| 1.1.2 仪器 | 第26页 |
| 1.1.3 实验动物 | 第26页 |
| 1.2 浆样品中CXB的分析方法 | 第26-28页 |
| 1.2.1 对照品溶液及标准血浆样品的配制 | 第26-27页 |
| 1.2.2 色谱条件 | 第27页 |
| 1.2.3 质谱条件 | 第27页 |
| 1.2.4 血浆样品的预处理 | 第27-28页 |
| 1.3 CXB在SD大鼠体内药代动力学的研究方法 | 第28页 |
| 1.3.1 静脉注射给药方案 | 第28页 |
| 1.3.2 模型拟合 | 第28页 |
| 2 结果与讨论 | 第28-37页 |
| 2.1 浆样品中CXB的分析方法 | 第28-35页 |
| 2.1.1 色谱条件 | 第28页 |
| 2.1.2 质谱分析 | 第28-30页 |
| 2.1.3 血浆样品前处理的优化 | 第30-31页 |
| 2.1.4 内标的选择 | 第31页 |
| 2.1.5 专属性 | 第31页 |
| 2.1.6 标准曲线及定量限 | 第31-33页 |
| 2.1.7 精密度和准确度 | 第33页 |
| 2.1.8 基质效应与提取回收率 | 第33-34页 |
| 2.1.9 稳定性 | 第34页 |
| 2.1.10 稀释效应 | 第34-35页 |
| 2.2 CXB在大鼠体内的药代动力学 | 第35-37页 |
| 第二节 柘树(?)酮N在大鼠体内的药代动力学研究 | 第37-46页 |
| 1 实验方法 | 第37-38页 |
| 1.1 材料与仪器 | 第37页 |
| 1.1.1 药品和试剂 | 第37页 |
| 1.1.2 仪器 | 第37页 |
| 1.1.3 实验动物 | 第37页 |
| 1.2 浆样品中CXN分析方法建立 | 第37页 |
| 1.2.1 对照品溶液及标准血浆样品的配制 | 第37页 |
| 1.2.2 色谱条件 | 第37页 |
| 1.2.3 质谱条件 | 第37页 |
| 1.2.4 浆样品的预处理 | 第37页 |
| 1.3 CXN在SD大鼠体内药代动力学的研究方法 | 第37-38页 |
| 1.3.1 给药方案 | 第37-38页 |
| 1.3.2 模型拟合 | 第38页 |
| 2 结果与讨论 | 第38-46页 |
| 2.1 血浆样品中CXN分析方法 | 第38-43页 |
| 2.1.1 色谱条件 | 第38页 |
| 2.1.2 质谱分析 | 第38-40页 |
| 2.1.3 浆样品前处理的优化 | 第40页 |
| 2.1.4 专属性 | 第40页 |
| 2.1.5 标准曲线及定量限 | 第40页 |
| 2.1.6 精密度和准确度 | 第40-42页 |
| 2.1.7 基质效应与提取回收率 | 第42页 |
| 2.1.8 稳定性 | 第42-43页 |
| 2.1.9 稀释效应 | 第43页 |
| 2.2 CXN在大鼠体内的血浆药代动力学 | 第43-46页 |
| 2.2.1 静脉注射给药 | 第43-44页 |
| 2.2.2 口服给药 | 第44-46页 |
| 本章小结 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-48页 |
| 第三章 柘树抗肿瘤活性成分在Caco-2细胞模型中口服吸收机理的研究 | 第48-60页 |
| 1 材料与仪器 | 第48-49页 |
| 1.1 细胞株 | 第48页 |
| 1.2 材料及试剂 | 第48页 |
| 1.3 仪器 | 第48-49页 |
| 2 方法 | 第49-51页 |
| 2.1 Caco-2细胞的培养 | 第49页 |
| 2.1.1 培养基的配制 | 第49页 |
| 2.1.2 Caco-2细胞培养操作流程 | 第49页 |
| 2.2 供试溶液的配制 | 第49页 |
| 2.3 细胞样品中CXN的高效液相色谱分析方法 | 第49-50页 |
| 2.3.1 色谱条件 | 第49-50页 |
| 2.3.2 方法专属性 | 第50页 |
| 2.3.3 标准曲线的制备 | 第50页 |
| 2.3.4 最低检测线和最低定量限 | 第50页 |
| 2.3.5 精密度和方法回收率 | 第50页 |
| 2.4 CXN的Caco-2细胞摄取研究 | 第50-51页 |
| 3 结果 | 第51-57页 |
| 3.1 细胞样品中CXN高效液相色谱分析方法学验证 | 第51-53页 |
| 3.1.1 方法专属性 | 第51页 |
| 3.1.2 标准曲线的制备 | 第51-52页 |
| 3.1.3 检测限及定量限 | 第52页 |
| 3.1.4 精密度 | 第52页 |
| 3.1.5 方法回收率 | 第52-53页 |
| 3.2 CXN细胞摄取试验结果 | 第53-57页 |
| 3.2.1 时间对CXN细胞摄取的影响 | 第53-54页 |
| 3.2.2 介质pH对CXN细胞摄取的影响 | 第54页 |
| 3.2.3 温度对CXN细胞摄取的影响 | 第54-55页 |
| 3.2.4 浓度对CXN细胞摄取的影响 | 第55-56页 |
| 3.2.5 P-糖蛋白抑制剂对CXN细胞摄取的影响 | 第56-57页 |
| 4 讨论 | 第57-58页 |
| 本章小结 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-60页 |
| 全文小结 | 第60-61页 |
| 综述:黄酮类化合物的药代动力学研究进展 | 第61-75页 |
| 硕士期间发表论文情况 | 第75-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 附图 | 第77-84页 |
