| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 前言 | 第9-11页 |
| 第一章 高效半制备液相色谱法分离制备木鳖子提取物 | 第11-16页 |
| 1.试剂及仪器 | 第11-12页 |
| 2.木鳖子醇提取液的制备 | 第12页 |
| 3.高效半制备液相色谱方法分离制备木鳖子提取物 | 第12-14页 |
| 3.1 色谱条件 | 第12-13页 |
| 3.2 色谱分离、收集及重现性 | 第13-14页 |
| 4.讨论 | 第14-15页 |
| 4.1 初提方法优化 | 第14-15页 |
| 4.2 制备色谱分离条件的选择 | 第15页 |
| 本章小结: | 第15-16页 |
| 第二章 基于LC-MS法定量ATP木鳖子提取物中己糖激酶抑制剂活性的筛选及活性测定 | 第16-39页 |
| 1.LC-MS测定ATP方法的建立 | 第19-21页 |
| 1.1 药品及试剂 | 第19页 |
| 1.2 仪器 | 第19-20页 |
| 1.3 溶液的配制 | 第20-21页 |
| 1.4 色谱分离条件及质谱检测条件 | 第21页 |
| 2.LC/MS测定ATP方法的验证 | 第21-24页 |
| 2.1 专属性 | 第21-22页 |
| 2.2 标准曲线与线性范围 | 第22页 |
| 2.3 灵敏度 | 第22-23页 |
| 2.4 精密度和准确度 | 第23页 |
| 2.5 稳定性 | 第23-24页 |
| 3.LC/MS测定ATP方法的优化和讨论 | 第24-28页 |
| 3.1 色谱分离条件的优化 | 第24-26页 |
| 3.2 质谱检测参数的优化 | 第26-28页 |
| 4.己糖激酶活性的测定(米氏常数Km的测定) | 第28-29页 |
| 4.1 ATP系列溶液的配制 | 第28页 |
| 4.2 己糖激酶酶促反应 | 第28页 |
| 4.3 己糖激酶米氏常数Km计算 | 第28-29页 |
| 4.4 讨论 | 第29页 |
| 5.3-BrPA己糖激酶抑制活性的测定 | 第29-31页 |
| 5.1 3-BrPA系列溶液的配制 | 第29页 |
| 5.2 己糖激酶酶促抑制反应 | 第29-31页 |
| 6.从木鳖子提取物中筛选己糖激酶抑制剂活性提取物 | 第31-33页 |
| 6.1 溶液配制 | 第31页 |
| 6.2 己糖激酶抑制活性提取物初筛 | 第31-32页 |
| 6.3 初筛结果及讨论 | 第32-33页 |
| 7.MBZA抑制活性的测定及计算 | 第33-39页 |
| 7.1 MBZA系列溶液的配制 | 第33页 |
| 7.2 己糖激酶酶促抑制反应 | 第33-34页 |
| 7.3 MBZA己糖激酶抑制活性的色谱图、计算及讨论 | 第34-39页 |
| 第三章 MBZA对人胃癌MKN-45细胞株的细胞毒性及MKN-45裸鼠模型抑瘤率的研究 | 第39-50页 |
| 第一节 MTT法测定MBZA对人胃癌MKN-45细胞的细胞毒性 | 第39-45页 |
| 1 材料与方法 | 第40-42页 |
| 1.1 细胞株(人胃癌细胞株MKN-45,购买于中国科学院上海细胞库) | 第40页 |
| 1.2 主要试剂配制 | 第40-41页 |
| 1.3 仪器与耗材 | 第41页 |
| 1.4 细胞培养及单层细胞制备 | 第41页 |
| 1.4 MTT法测定MBZA对MKN-45细胞的抑制率 | 第41-42页 |
| 2. 结果及计算讨论 | 第42-45页 |
| 2.1 细胞形态观察 | 第42页 |
| 2.2 MTT法MBZA测定结果及分析 | 第42-44页 |
| 3.3 结论 | 第44-45页 |
| 第二节 测定MBZA对MKN-45裸小鼠移植瘤模型抑瘤活性 | 第45-50页 |
| 1. 材料及方法 | 第45页 |
| 1.1 动物及材料 | 第45页 |
| 2. 动物实验 | 第45-46页 |
| 3. 实验结果及讨论 | 第46-49页 |
| 3.1 裸鼠体重变化 | 第46-47页 |
| 3.2 裸鼠瘤体积变化 | 第47-49页 |
| 3.3 抑瘤率计算 | 第49页 |
| 4. 结论 | 第49-50页 |
| 全文总结 | 第50-51页 |
| 课题创新之处 | 第51页 |
| 下一步研究设想 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 综述:中药活性成分筛选技术的现状与发展 | 第58-80页 |
| 在校期间以第一作者撰写的文章 | 第80-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
