| 内容提要 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第12-21页 |
| 1.1 前言 | 第12-13页 |
| 1.2 选用心肌干细胞的原因 | 第13-14页 |
| 1.3 CSCS的简介 | 第14-18页 |
| 1.3.1 CSCs的生物学特性 | 第15页 |
| 1.3.2 CSCs的起源、数量与分型 | 第15-18页 |
| 1.4 鹿茸多肽的研究现状 | 第18页 |
| 1.5 本实验的研究意义 | 第18-19页 |
| 1.6 本实验立题依据及研究内容 | 第19-21页 |
| 第2章 实验材料 | 第21-29页 |
| 2.1 实验动物 | 第21页 |
| 2.2 实验仪器 | 第21-22页 |
| 2.3 实验试剂 | 第22-23页 |
| 2.4 试剂配制 | 第23-29页 |
| 第3章 实验方法 | 第29-41页 |
| 3.1 大鼠心脏取材 | 第29页 |
| 3.2 大鼠CSCS的分离提取 | 第29-30页 |
| 3.3 大鼠心肌干细胞的原代培养 | 第30页 |
| 3.4 大鼠心肌干细胞的传代培养 | 第30页 |
| 3.5 大鼠CSCS的冻存 | 第30-31页 |
| 3.6 心肌干细胞的复苏 | 第31-32页 |
| 3.7 心肌干细胞的纯化 | 第32-33页 |
| 3.8 心肌干细胞的鉴定 | 第33-35页 |
| 3.9 大鼠心肌干细胞的药物诱导分化 | 第35-36页 |
| 3.9.1 诱导分化的分组 | 第35页 |
| 3.9.2 心肌干细胞的药物诱导分化 | 第35-36页 |
| 3.10检测早期心肌特异性转录因子的表达 | 第36-41页 |
| 3.10.1 PCR检测检测早期心肌特异性转录因子 | 第36-39页 |
| 3.10.2 Western blot方法鉴定心肌特异性转录因子GATA-4 蛋白的特异性 | 第39-41页 |
| 第4章 实验结果 | 第41-51页 |
| 4.1 心肌干细胞原代培养的细胞形态 | 第41-45页 |
| 4.2 细胞纯化后的细胞形态 | 第45-46页 |
| 4.3 心肌干细胞表面标志物鉴定结果 | 第46-48页 |
| 4.3.1 心肌干细胞特异性表面标志物c-Kit的表达结果 | 第46-47页 |
| 4.3.2 心肌干细胞特异性表面标志物Sca-1 的表达结果 | 第47页 |
| 4.3.3 心肌干细胞特异性表面标志物MDR-1 的表达结果 | 第47-48页 |
| 4.4 不同浓度梯度的鹿茸多肽诱导CSCS细胞分化的细胞形态 | 第48-49页 |
| 4.5 鹿茸多肽诱导后细胞心肌特异性转录因子GATA-4 的表达 | 第49-51页 |
| 4.5.1 心肌特异性转录因子GATA-4 的PCR结果 | 第49-50页 |
| 4.5.2 心肌特异性转录因子GATA-4 的Western blot结果 | 第50-51页 |
| 第5章 讨论 | 第51-55页 |
| 5.1 细胞原代培养的讨论 | 第51-52页 |
| 5.2 细胞纯化和鉴定的讨论 | 第52-53页 |
| 5.3 药物对细胞分化影响的讨论 | 第53-55页 |
| 第6章 结论与展望 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-65页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
