| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 英文缩写词中文对照表 | 第11-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-33页 |
| 1.1 虾青素概述 | 第15-22页 |
| 1.1.1 虾青素的立体异构体 | 第16页 |
| 1.1.2 虾青素的几何异构体 | 第16页 |
| 1.1.3 虾青素的物理特性 | 第16-17页 |
| 1.1.4 虾青素的来源 | 第17-18页 |
| 1.1.5 虾青素的主要功能 | 第18-21页 |
| 1.1.6 虾青素的商业应用 | 第21-22页 |
| 1.2 前列腺癌简介 | 第22-24页 |
| 1.2.1 前列腺癌在我国的发病状况 | 第22-23页 |
| 1.2.2 前列腺癌的诊断与治疗 | 第23页 |
| 1.2.3 饮食与前列腺癌 | 第23-24页 |
| 1.3 雄激素抵抗型前列腺癌(HRPC)研究现状 | 第24-25页 |
| 1.4 HRPC细胞系 | 第25-26页 |
| 1.5 丝裂原活化蛋白激酶通路(MAPK通路) | 第26-29页 |
| 1.5.1 ERK1/2途径 | 第27-28页 |
| 1.5.2 JNK途径 | 第28页 |
| 1.5.3 p38途径 | 第28页 |
| 1.5.4 ERK5途径 | 第28-29页 |
| 1.6 PI3K/AKT通路 | 第29页 |
| 1.7 MIRNA简介 | 第29-32页 |
| 1.7.1 MiRNA在前列腺癌中的研究进展 | 第30页 |
| 1.7.2 MiRNA与前列腺癌细胞增殖 | 第30页 |
| 1.7.3 MiRNA与前列腺癌细胞凋亡 | 第30-31页 |
| 1.7.4 MiRNA与前列腺癌上皮间质转化 | 第31页 |
| 1.7.5 MiRNA与前列腺癌细胞侵袭迁移 | 第31-32页 |
| 1.8 前列腺癌与菌群 | 第32页 |
| 1.9 研究的目的与内容 | 第32-33页 |
| 第二章 虾青素对铜离子诱导损伤的前列腺细胞的影响 | 第33-47页 |
| 2.1 前言 | 第33页 |
| 2.2 材料与方法 | 第33-38页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第33-34页 |
| 2.2.2 细胞培养相关试剂配制 | 第34-35页 |
| 2.2.3 细胞复苏 | 第35页 |
| 2.2.4 细胞传代 | 第35页 |
| 2.2.5 细胞冻存 | 第35-36页 |
| 2.2.6 铜离子浓度筛选 | 第36页 |
| 2.2.7 虾青素浓度筛选 | 第36页 |
| 2.2.8 细胞存活率测定 | 第36页 |
| 2.2.9 细胞凋亡检测 | 第36-37页 |
| 2.2.10 活性氧水平测定 | 第37页 |
| 2.2.11 细胞线粒体膜电位测定 | 第37页 |
| 2.2.12 细胞MDA含量、SOD活力、CAT活力和GSH-Px活力的测定 | 第37页 |
| 2.2.13 数据统计分析 | 第37-38页 |
| 2.3 结果与分析 | 第38-45页 |
| 2.3.1 Cu~(2+)对前列腺细胞的损伤模型 | 第38-39页 |
| 2.3.2 虾青素对前列腺细胞的影响 | 第39-40页 |
| 2.3.3 虾青素对Cu~(2+)对损伤细胞存活率的影响 | 第40页 |
| 2.3.4 虾青素对Cu~(2+)对损伤细胞凋亡率的影响 | 第40-42页 |
| 2.3.5 虾青素对Cu~(2+)对损伤细胞ROS水平的影响 | 第42页 |
| 2.3.6 虾青素对Cu~(2+)对损伤细胞MMP水平的影响 | 第42-43页 |
| 2.3.7 虾青素对Cu~(2+)对损伤细胞MDA的影响 | 第43-44页 |
| 2.3.8 虾青素对Cu~(2+)对损伤细胞SOD、CAT和GSH-Px的影响 | 第44-45页 |
| 2.4 讨论 | 第45-46页 |
| 2.5 本章小结 | 第46-47页 |
| 第三章 虾青素保护PC-3细胞免受H_2O_2氧化应激的通路研究 | 第47-64页 |
| 3.1 前言 | 第47页 |
| 3.2 材料与方法 | 第47-52页 |
| 3.2.1 仪器与试剂 | 第47-49页 |
| 3.2.2 不同浓度过氧化氢对PC-3细胞氧化损伤的作用 | 第49页 |
| 3.2.3 虾青素对H_2O_2诱导的PC-3细胞的损伤模型的细胞存活率影响 | 第49页 |
| 3.2.4 虾青素对H_2O_2诱导的PC-3细胞的损伤模型的活性氧水平的影响 | 第49-50页 |
| 3.2.5 虾青素对H_2O_2诱导的PC-3细胞的损伤模型的细胞凋亡的影响 | 第50页 |
| 3.2.6 Western blotting | 第50-52页 |
| 3.2.7 数据统计学处理 | 第52页 |
| 3.3 结果与分析 | 第52-62页 |
| 3.3.1 不同浓度H_2O_2对PC-3细胞氧化损伤作用 | 第52-53页 |
| 3.3.2 不同浓度虾青素对H_2O_2诱导的PC-3细胞存活率的影响 | 第53页 |
| 3.3.3 不同浓度虾青素对H_2O_2诱导的PC-3细胞活性氧水平的影响 | 第53-54页 |
| 3.3.4 不同浓度虾青素对H_2O_2诱导的PC-3细胞凋亡的影响 | 第54-55页 |
| 3.3.5 虾青素上调H_2O_2诱导PC-3细胞中Bcl-2/Bax的表达水平并抑制caspase 3的激活 | 第55-56页 |
| 3.3.6 虾青素对H_2O_2诱导的PC-3细胞丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)通路的影响 | 第56-58页 |
| 3.3.7 虾青素激活Nrf2,促进HO-1的表达 | 第58-59页 |
| 3.3.8 虾青素通过ERK和PI3K/Akt激活Nrf2,上调HO-1的表达 | 第59-61页 |
| 3.3.9 虾青素通过激活ERK通路来抑制H_2O_2介导的细胞毒性 | 第61-62页 |
| 3.4 讨论 | 第62-63页 |
| 3.5 本章小结 | 第63-64页 |
| 第四章 前列腺癌与良性前列腺增生中菌群结构分析 | 第64-80页 |
| 4.1 前言 | 第64页 |
| 4.2 材料与方法 | 第64-69页 |
| 4.2.1 仪器与试剂 | 第64-65页 |
| 4.2.2 样品收集 | 第65-66页 |
| 4.2.3 样品DNA的制备 | 第66页 |
| 4.2.4 16S rRNA gene V3区扩增 | 第66-67页 |
| 4.2.5 变性梯度凝胶电泳DGGE | 第67-68页 |
| 4.2.6 DGGE条带回收 | 第68页 |
| 4.2.7 PCR扩增及产物回收 | 第68页 |
| 4.2.8 目的片断TA克隆 | 第68-69页 |
| 4.2.9 蓝白斑筛选 | 第69页 |
| 4.2.10 质粒提取与测序 | 第69页 |
| 4.2.11 进化树分析 | 第69页 |
| 4.3 结果与分析 | 第69-77页 |
| 4.3.1 PCR扩增产物电泳图谱 | 第69-70页 |
| 4.3.2 DGGE电泳图谱 | 第70-71页 |
| 4.3.3 DNA回收纯化与测序 | 第71-72页 |
| 4.3.4 序列分析 | 第72-75页 |
| 4.3.5 BLAST分析 | 第75页 |
| 4.3.6 进化树分析 | 第75-77页 |
| 4.4 讨论 | 第77-79页 |
| 4.5 本章小结 | 第79-80页 |
| 第五章 虾青素抑制裸鼠前列腺移植瘤生长 | 第80-101页 |
| 5.1 前言 | 第80-81页 |
| 5.2 材料与方法 | 第81-88页 |
| 5.2.1 实验动物 | 第81页 |
| 5.2.2 实验动物屏障系统 | 第81页 |
| 5.2.3 细胞培养 | 第81页 |
| 5.2.4 裸鼠皮下移植瘤模型建立 | 第81页 |
| 5.2.5 虾青素干预实验 | 第81-82页 |
| 5.2.6 收集标本与预处理 | 第82页 |
| 5.2.7 H&E染色 | 第82页 |
| 5.2.8 免疫组化染色 | 第82-83页 |
| 5.2.9 TUNEL法检测 | 第83页 |
| 5.2.10 Microarray检测 | 第83-86页 |
| 5.2.11 PCR-DGGE | 第86-87页 |
| 5.2.12 统计学分析 | 第87-88页 |
| 5.3 结果与分析 | 第88-98页 |
| 5.3.1 虾青素抑制PC-3移植瘤生长 | 第88-89页 |
| 5.3.2 虾青素降低肿瘤细胞分化,促进肿瘤细胞凋亡 | 第89-92页 |
| 5.3.3 虾青素影响裸鼠肠道菌群 | 第92-96页 |
| 5.3.4 虾青素影响miRNA表达 | 第96-98页 |
| 5.4 讨论 | 第98-99页 |
| 5.5 本章小结 | 第99-101页 |
| 第六章 结论与展望 | 第101-103页 |
| 6.1 主要研究结论 | 第101-102页 |
| 6.2 主要创新点 | 第102页 |
| 6.3 后续工作展望 | 第102-103页 |
| 参考文献 | 第103-117页 |
| 致谢 | 第117-118页 |
| 附:个人简介及攻读博士期间科研成果 | 第118-119页 |
