| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 英文缩略表 | 第13-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-24页 |
| 引言 | 第14页 |
| 1.1 桦褐孔菌简介 | 第14-18页 |
| 1.1.1 桦褐孔菌的外观及化学成分研究 | 第15-16页 |
| 1.1.2 桦褐孔菌药理作用研究概况 | 第16-18页 |
| 1.2 真菌多糖简介 | 第18-20页 |
| 1.2.1 真菌多糖的研究历程 | 第19页 |
| 1.2.2 真菌多糖的特性 | 第19-20页 |
| 1.3 桦褐孔菌多糖国内外研究进展 | 第20-21页 |
| 1.3.1 IOPS的提取方法 | 第20页 |
| 1.3.2 IOPS的化学结构 | 第20页 |
| 1.3.3 IOPS的抗癌机制 | 第20-21页 |
| 1.4 本课题研究意义、内容、创新点和技术路线 | 第21-24页 |
| 1.4.1 本课题的研究目的和意义 | 第21页 |
| 1.4.2 本课题的研究内容 | 第21-22页 |
| 1.4.3 本课题的创新点 | 第22页 |
| 1.4.4 本课题的技术路线 | 第22-24页 |
| 第二章 响应面法优化IOPS的提取工艺 | 第24-38页 |
| 引言 | 第24页 |
| 2.1 实验材料 | 第24-25页 |
| 2.1.1 药材 | 第24页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第24页 |
| 2.1.3 主要仪器和设备 | 第24-25页 |
| 2.2 试验方法 | 第25-29页 |
| 2.2.1 桦褐孔菌原料的预处理 | 第25页 |
| 2.2.2 IOPS提取工艺流程图 | 第25-26页 |
| 2.2.3 酶辅助水提醇沉法提取IOPS的单因素实验 | 第26-27页 |
| 2.2.5 多糖的含量测定 | 第27-28页 |
| 2.2.6 多糖得率的计算 | 第28-29页 |
| 2.2.7 sevage法脱蛋白 | 第29页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第29-36页 |
| 2.3.1 标准曲线的绘制 | 第29页 |
| 2.3.2 IOPS提取单因素实验结果 | 第29-32页 |
| 2.3.3 响应面法优化IOPS提取工艺 | 第32-35页 |
| 2.3.4 纤维素酶辅助提取IOPS验证试验 | 第35页 |
| 2.3.5 sevage法除蛋白后IOPS纯度 | 第35-36页 |
| 2.4 本章小结 | 第36-38页 |
| 第三章 IOPS体外抗癌活性 | 第38-48页 |
| 引言 | 第38页 |
| 3.1 实验材料 | 第38-39页 |
| 3.1.1 药材 | 第38页 |
| 3.1.2 细胞和动物 | 第38页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第38-39页 |
| 3.1.4 主要仪器与设备 | 第39页 |
| 3.2 试验方法 | 第39-41页 |
| 3.2.1 试验用主要试剂的配制 | 第39页 |
| 3.2.2 细胞的复苏及传代培养 | 第39页 |
| 3.2.3 CCK-8 法测定IOPS对肿瘤细胞的增殖抑制活性 | 第39-40页 |
| 3.2.4 IOPS含药血清的制备 | 第40页 |
| 3.2.5 含药血清的灭活 | 第40页 |
| 3.2.6 CCK-8 法检测IOPS含药血清对肿瘤细胞的细胞毒作用 | 第40页 |
| 3.2.7 倒置显微镜观察细胞的生长情况 | 第40页 |
| 3.2.8 AO/EB双染色观察细胞凋亡 | 第40-41页 |
| 3.2.9 统计学处理 | 第41页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第41-47页 |
| 3.3.1 IOPS对肿瘤细胞的细胞毒活性 | 第41-42页 |
| 3.3.2 IOPS含药血清对肿瘤细胞的细胞毒活性 | 第42-43页 |
| 3.3.3 倒置显微镜观察细胞的生长情况 | 第43-45页 |
| 3.3.4 AO/EB双染色观察肿瘤细胞凋亡 | 第45-47页 |
| 3.4 本章小结 | 第47-48页 |
| 第四章 IOPS体内抗癌活性 | 第48-66页 |
| 引言 | 第48页 |
| 4.1 实验材料 | 第48-49页 |
| 4.1.1 药材 | 第48页 |
| 4.1.2 动物 | 第48页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第48-49页 |
| 4.1.4 主要仪器与设备 | 第49页 |
| 4.2 试验方法 | 第49-52页 |
| 4.2.1 裸鼠肝癌动物模型的构建及实验分组 | 第49页 |
| 4.2.2 肿瘤体积、裸鼠重量及抑瘤率 | 第49页 |
| 4.2.3 脏器系数的测定 | 第49-50页 |
| 4.2.4 血细胞检测 | 第50页 |
| 4.2.5 HE染色组织病理学检查 | 第50页 |
| 4.2.6 IOPS对荷瘤鼠外周血中细胞因子水平的影响 | 第50-51页 |
| 4.2.7 IOPS对荷瘤鼠存活时间的影响 | 第51-52页 |
| 4.2.8 统计学处理 | 第52页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第52-63页 |
| 4.3.1 HepG2细胞成瘤情况及裸鼠生长状态 | 第52-53页 |
| 4.3.2 IOPS对HepG2荷瘤裸鼠体重和肿瘤体积变化的影响 | 第53-54页 |
| 4.3.3 IOPS对HepG2荷瘤鼠体内抗癌作用 | 第54-55页 |
| 4.3.4 IOPS对荷瘤鼠免疫器官功能的影响 | 第55-56页 |
| 4.3.5 IOPS对荷瘤裸鼠血常规指标的影响 | 第56-57页 |
| 4.3.6 HE病理切片观察肿瘤组织和肝脏组织 | 第57-59页 |
| 4.3.7 IOPS对荷瘤裸鼠血清中细胞因子分泌的影响 | 第59-62页 |
| 4.3.8 IOPS对荷瘤裸鼠存活时间的影响 | 第62-63页 |
| 4.4 本章小结 | 第63-66页 |
| 第五章 IOPS的毒理学评价 | 第66-74页 |
| 引言 | 第66页 |
| 5.1 实验材料 | 第66-67页 |
| 5.1.1 药材 | 第66页 |
| 5.1.2 细胞与动物 | 第66页 |
| 5.1.3 主要试剂 | 第66页 |
| 5.1.4 主要仪器及设备 | 第66-67页 |
| 5.2 试验方法 | 第67-69页 |
| 5.2.1 试验用主要试剂的配制 | 第67页 |
| 5.2.2 细胞毒性实验 | 第67-68页 |
| 5.2.3 急性毒性实验 | 第68页 |
| 5.2.4 精子畸形试验 | 第68页 |
| 5.2.5 统计学处理 | 第68-69页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第69-73页 |
| 5.3.1 IOPS对LO2细胞的细胞毒活性 | 第69-70页 |
| 5.3.2 IOPS含药血清对LO2细胞的细胞毒活性 | 第70-71页 |
| 5.3.3 急性毒性试验结果 | 第71-72页 |
| 5.3.4 小鼠精子畸形实验 | 第72-73页 |
| 5.4 本章小结 | 第73-74页 |
| 第六章 全文总结与展望 | 第74-76页 |
| 6.1 全文总结 | 第74页 |
| 6.2 展望 | 第74-76页 |
| 致谢 | 第76-78页 |
| 参考文献 | 第78-84页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文及取得的研究成果 | 第84页 |
