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Paenibacillus polymyxa Nws-pp2普鲁兰酶的基因克隆、异源表达与酶学性质研究

摘要第5-6页
Abstract第6页
第1章 前言第11-23页
    1.1 淀粉酶概述第11-12页
    1.2 普鲁兰酶概述第12-19页
        1.2.1 普鲁兰酶的分类和作用方式第12-13页
        1.2.2 普鲁兰酶产生菌第13-15页
        1.2.3 普鲁兰酶的异源表达第15-16页
        1.2.4 普鲁兰酶的应用第16-19页
            1.2.4.1 普鲁兰酶应用在生产干啤酒中第18页
            1.2.4.2 普鲁兰酶应用在发酵生产高麦芽糖浆中第18页
            1.2.4.3 普鲁兰酶应用在发酵生产高葡萄糖糖浆中第18-19页
    1.3 Ⅰ型普鲁兰酶(Type Ⅰ)概述第19-20页
    1.4 枯草芽孢杆菌表达系统介绍第20-21页
        1.4.1 Bacillus subtilis作为表达宿主的优缺点第20-21页
        1.4.2 外源基因的表达第21页
    1.5 课题意义和课题研究内容第21-23页
第2章 菌种的分类学地位鉴定与生理生化特性第23-32页
    2.1 引言第23页
    2.2 实验材料第23-24页
        2.2.1 菌株第23页
        2.2.2 培养基和使用方法第23页
        2.2.3 载体和工具酶第23页
        2.2.4 试剂,仪器与耗材第23-24页
        2.2.5 PCR引物第24页
    2.3 实验方法与步骤第24-27页
        2.3.1 细菌的生理生化试验第25-26页
            2.3.1.1 触酶试验:过氧化氢酶试验第25页
            2.3.1.2 Voges Proskauer(V-P)试验第25页
            2.3.1.3 氧化酶试验第25页
            2.3.1.4 尿酶试验第25页
            2.3.1.5 糖醇利用试验第25-26页
            2.3.1.6 不同温度条件下的生长情况第26页
        2.3.2 分子生物学16S rDNA序列分析第26-27页
            2.3.2.1 细菌基因组DNA的提取第26页
            2.3.2.2 16S rNA基因序列扩增第26-27页
            2.3.2.3 目的产物的回收第27页
            2.3.2.4 TA克隆第27页
    2.4 实验结果与分析第27-30页
        2.4.1 原始菌Nws-pp2普鲁兰酶酶活检测第27-28页
        2.4.2 16S rDNA序列分析第28-30页
            2.4.2.1 细菌总DNA的抽提第28-29页
            2.4.2.2 16S rNA的序列分析第29-30页
        2.4.3 Nws-pp2生理生化试验第30页
    2.5 本章小结第30-32页
第3章 普鲁兰酶的基因克隆以及重组质粒的构建第32-52页
    3.1 引言第32页
    3.2 实验材料第32-37页
        3.2.1 菌株和质粒第32-35页
        3.2.2 工具酶和试剂盒第35页
        3.2.3 培养基和溶液第35-36页
        3.2.4 试剂,仪器与耗材第36-37页
        3.2.5 PCR引物第37页
    3.3 实验方法与步骤第37-41页
        3.3.1 细菌基因组DNA的提取第37页
        3.3.2 质粒DNA的提取第37-38页
        3.3.3 核酸电泳凝胶回收第38-39页
        3.3.4 琼脂糖凝胶电泳第39页
        3.3.5 TA克隆第39页
        3.3.6 大肠杆菌感受态制备及转化第39-40页
        3.3.7 枯草芽孢杆菌感受态制备及转化第40-41页
        3.3.8 菌种保藏第41页
    3.4 pulN基因克隆与分析第41-42页
        3.4.1 简并PCR扩增第41-42页
        3.4.2 TA克隆的菌落PCR验证第42页
    3.5 重组质粒的构建第42-45页
        3.5.1 克隆载体与目的基因的连接第42-43页
        3.5.2 酶切第43-44页
        3.5.3 连接双酶切产物并转化第44-45页
    3.6 实验结果与讨论第45-49页
        3.6.1 普鲁兰酶基因的获得与分析第45-48页
        3.6.2 重组表达载体的验证第48-49页
    3.7 本章小结第49-52页
第4章 普鲁兰酶的表达,酶学性质和底物催化的研究第52-72页
    4.1 引言第52页
    4.2 实验材料第52-56页
        4.2.1 菌种和质粒第52页
        4.2.2 试剂盒与工具酶第52页
        4.2.3 培养基与溶液第52-54页
        4.2.4 试剂、仪器与耗材第54-56页
    4.3 实验方法与步骤第56-60页
        4.3.1 重组菌的诱导表达及超声破碎第56页
        4.3.2 SDS-PAGE蛋白电泳凝胶的配制第56页
        4.3.3 葡萄糖标准曲线绘制第56-57页
        4.3.4 重组普鲁兰酶酶活测定第57页
        4.3.5 Bradford法定蛋白浓度第57-58页
        4.3.6 重组蛋白的亲和层析纯化第58-59页
        4.3.7 酶反应动力学参数的测量第59页
        4.3.8 温度和pH对酶活的影响第59页
        4.3.9 各金属离子和化学试剂对酶活的影响第59-60页
        4.3.10 重组普鲁兰酶降解底物底物谱分析第60页
        4.3.11 降解不同底物的产物分析第60页
    4.4 实验结果与分析第60-71页
        4.4.1 目的蛋白在大肠杆菌中的表达与纯化第60-64页
            4.4.1.1 目的蛋白在大肠杆菌中的表达第60-63页
            4.4.1.2 重组蛋白的纯化第63-64页
        4.4.2 目的蛋白在枯草芽孢杆菌中的表达第64-65页
        4.4.3 酶反应动力学参数第65-66页
        4.4.4 反应温度和pH对酶活的影响第66-67页
        4.4.5 金属离子和化学试剂对酶活的影响第67-68页
        4.4.6 重组普鲁兰酶PulN可降解底物及产物分析第68-71页
    4.5 本章小结第71-72页
第5章 结论与展望第72-74页
    5.1 文章结论第72页
    5.2 展望第72-74页
参考文献第74-79页
致谢第79页

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