| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-20页 |
| 1.1 纤维类生物质能源 | 第11页 |
| 1.2 玉米秸秆的主要组分 | 第11-13页 |
| 1.2.1 纤维素 | 第11-12页 |
| 1.2.2 半纤维素 | 第12页 |
| 1.2.3 木质素 | 第12页 |
| 1.2.4 果胶质 | 第12-13页 |
| 1.2.5 细胞壁蛋白 | 第13页 |
| 1.3 水解玉米秸秆的主要酶系 | 第13-15页 |
| 1.3.1 纤维素酶 | 第13-14页 |
| 1.3.1.1 纤维素酶的分类 | 第13-14页 |
| 1.3.1.2 纤维素酶的作用机理 | 第14页 |
| 1.3.2 木聚糖酶 | 第14页 |
| 1.3.3 果胶酶 | 第14-15页 |
| 1.3.4 其他酶 | 第15页 |
| 1.4 玉米秸秆的水解方法 | 第15-16页 |
| 1.4.1 稀酸水解法 | 第15页 |
| 1.4.2 浓酸水解法 | 第15-16页 |
| 1.4.3 酶水解法 | 第16页 |
| 1.4.4 酶酸联合水解法 | 第16页 |
| 1.4.5 临界水两步水解法 | 第16页 |
| 1.5 复合酶协同降解的应用 | 第16-18页 |
| 1.5.1 复合酶在饲料中的应用 | 第17页 |
| 1.5.2 复合酶在淀粉质乙醇发酵中的应用 | 第17-18页 |
| 1.5.3. 复合酶在旧报纸(ONP)脱墨中的应用 | 第18页 |
| 1.6 本课题的研究内容及意义 | 第18-20页 |
| 1.6.1 本课题的研究内容 | 第18-19页 |
| 1.6.2 本课题的研究意义 | 第19-20页 |
| 第二章 玉米秸秆复合酶同步水解条件优化 | 第20-31页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.1 材料 | 第20页 |
| 2.1.2 试剂 | 第20-21页 |
| 2.2 实验仪器 | 第21页 |
| 2.3 实验方法 | 第21-23页 |
| 2.3.1 试剂配制 | 第21页 |
| 2.3.2 含水率的测定 | 第21-22页 |
| 2.3.3 酶解液中总还原糖的测定 | 第22页 |
| 2.3.4 酶水解率的计算 | 第22-23页 |
| 2.3.5 纤维素酶酶解条件的确定 | 第23页 |
| 2.3.6 复合酶酶解条件的确定 | 第23页 |
| 2.4 结果与分析 | 第23-30页 |
| 2.4.1 纤维素酶浓度对还原糖量的影响 | 第23-24页 |
| 2.4.2 底物质量浓度对还原糖量的影响 | 第24-26页 |
| 2.4.3 温度对还原糖量的影响 | 第26-27页 |
| 2.4.4 复合酶中木聚糖酶添加量的确定 | 第27-28页 |
| 2.4.5 复合酶中果胶酶添加量的确定 | 第28-29页 |
| 2.4.6 复合酶中α-淀粉酶添加量的确定 | 第29-30页 |
| 2.5 小结 | 第30-31页 |
| 第三章 玉米秸秆多酶分步水解条件优化 | 第31-40页 |
| 3.1 材料与试剂 | 第31页 |
| 3.1.1 材料 | 第31页 |
| 3.1.2 试剂 | 第31页 |
| 3.2 实验仪器 | 第31-32页 |
| 3.3 实验方法 | 第32-33页 |
| 3.3.1 木聚糖酶水解条件的确定 | 第32页 |
| 3.3.1.1 木聚糖酶酶用量的确定 | 第32页 |
| 3.3.1.2 木聚糖酶酶解pH的确定 | 第32页 |
| 3.3.2 果胶酶水解条件的确定 | 第32-33页 |
| 3.3.2.1 果胶酶酶用量的确定 | 第32页 |
| 3.3.2.2 果胶酶酶解pH的确定 | 第32-33页 |
| 3.3.3 α-淀粉酶水解条件的确定 | 第33页 |
| 3.3.3.1 α-淀粉酶酶用量的确定 | 第33页 |
| 3.3.3.2 α-淀粉酶酶解pH的确定 | 第33页 |
| 3.3.4 多酶分步水解条件的确定 | 第33页 |
| 3.4 结果与分析 | 第33-39页 |
| 3.4.1 木聚糖酶浓度对还原糖量的影响 | 第33-34页 |
| 3.4.2 木聚糖酶酶解pH对还原糖量的影响 | 第34-35页 |
| 3.4.3 果胶酶浓度对还原糖量的影响 | 第35页 |
| 3.4.4 果胶酶酶解pH对还原糖量的影响 | 第35-36页 |
| 3.4.5 α-淀粉酶酶用量对还原糖量的影响 | 第36-37页 |
| 3.4.6 α-淀粉酶酶解pH对还原糖量的影响 | 第37页 |
| 3.4.7 不同酶解顺序对总还原糖量及水解率的影响 | 第37-39页 |
| 3.5 小结 | 第39-40页 |
| 第四章 黑曲霉固态发酵产复合酶水解玉米秸秆的条件优化 | 第40-50页 |
| 4.1 材料与试剂 | 第40-41页 |
| 4.1.1 材料 | 第40页 |
| 4.1.2 试剂 | 第40-41页 |
| 4.1.3 培养基 | 第41页 |
| 4.2 实验仪器 | 第41-42页 |
| 4.3 实验方法 | 第42-45页 |
| 4.3.1 黑曲霉固体培养 | 第42页 |
| 4.3.2 粗酶液的制备 | 第42页 |
| 4.3.3 玉米秸秆水解 | 第42页 |
| 4.3.4 酶活性的测定 | 第42-45页 |
| 4.3.4.1 FPA酶活 | 第42-43页 |
| 4.3.4.2 CMC酶活 | 第43-44页 |
| 4.3.4.3 木聚糖酶酶活 | 第44页 |
| 4.3.4.4 果胶酶酶活 | 第44-45页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第45-49页 |
| 4.4.1 培养时间对酶活及水解率的影响 | 第45-47页 |
| 4.4.2 抽提液体积对酶活及水解率的影响 | 第47-48页 |
| 4.4.3 提酶时间对酶活及水解率的影响 | 第48-49页 |
| 4.5 小结 | 第49-50页 |
| 第五章 结论及展望 | 第50-52页 |
| 5.1 结论 | 第50页 |
| 5.2 展望 | 第50-52页 |
| 参考文献 | 第52-56页 |
| 硕士期间参与的科研项目与成果 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
