| 第一章 绪言 | 第12-87页 |
| 1.1 中药研究的化学法 | 第12-13页 |
| 1.2 中药中常见的化学成分 | 第13-30页 |
| 1.2.1 黄酮类化合物的研究概况 | 第13-18页 |
| 1.2.1.1 黄酮类化合物的化学结构及分布 | 第13-16页 |
| 1.2.1.2 黄酮类化合物的活性研究 | 第16-17页 |
| 1.2.1.3 黄酮类化合物的分离、提取和测定方法 | 第17-18页 |
| 1.2.2 皂苷类化合物的研究概况 | 第18-24页 |
| 1.2.2.1 皂苷化合物的化学结构和分布 | 第18-21页 |
| 1.2.2.2 皂苷的生理活性 | 第21-23页 |
| 1.2.2.3 皂苷类化合物的分离和和检测 | 第23-24页 |
| 1.2.3 二萜生物碱的研究概况 | 第24-30页 |
| 1.2.3.1 二萜生物碱的分类 | 第24-26页 |
| 1.2.3.2 二萜生物碱的毒性和药理活性 | 第26-28页 |
| 1.2.3.3 二萜生物碱的分离和测定 | 第28-30页 |
| 1.3 中药活性成分的提取 | 第30-48页 |
| 1.3.1 有效成分提取技术概述 | 第30-31页 |
| 1.3.2 索氏提取法 | 第31-33页 |
| 1.3.3 超声辅助提取法 | 第33-36页 |
| 1.3.3.1 原理 | 第33-34页 |
| 1.3.3.2 超声辅助提取法在中药有效成分提取中的应用 | 第34-36页 |
| 1.3.4 微波辅助提取 | 第36-48页 |
| 1.3.4.1 微波提取方法的原理和加热机理 | 第36-39页 |
| 1.3.4.2 影响微波辅助提起效率的因素 | 第39-41页 |
| 1.3.4.3 微波辅助提取法的分类 | 第41-42页 |
| 1.3.4.4 MAE 技术在中草药和天然植物有效成分提取中的应用 | 第42-45页 |
| 1.3.4.5 微波辅助提取技术与其他提取技术比较 | 第45-48页 |
| 1.4 中药炮制和中药复方的化学物质基础 | 第48-52页 |
| 1.4.1 中药炮制的概念及内容 | 第48页 |
| 1.4.2 中药炮制的基本理论 | 第48-49页 |
| 1.4.3 中药炮制的作用及基本方法 | 第49页 |
| 1.4.4 中药复方配伍的化学研究 | 第49-52页 |
| 1.4.4.1 单味中药化学成分的研究 | 第49-50页 |
| 1.4.4.2 复方中药化学成份的研究 | 第50-52页 |
| 1.5 中药有效成分在提取、炮制和配伍中的化学变化 | 第52-60页 |
| 1.5.1 中药有效成分在提取过程中的化学变化 | 第52-54页 |
| 1.5.2 中药炮制过程中化学成分的变化 | 第54-57页 |
| 1.5.2.1 水解 | 第54-55页 |
| 1.5.2.2 异构化 | 第55页 |
| 1.5.2.3 氧化 | 第55-56页 |
| 1.5.2.4 置换 | 第56页 |
| 1.5.2.5 分解 | 第56页 |
| 1.5.2.6 缩合 | 第56-57页 |
| 1.5.3 中药配伍过程中化学成分的变化 | 第57-60页 |
| 1.5.3.1 沉淀 | 第58页 |
| 1.5.3.2 成分间的相互作用 | 第58-59页 |
| 1.5.3.3 pH 对化学成分溶出的影响 | 第59页 |
| 1.5.3.4 氧化还原反应对复方化学成份的影响 | 第59页 |
| 1.5.3.5 剂型改变对化学成分的影响 | 第59-60页 |
| 1.6 中药有效成分的代谢 | 第60-68页 |
| 1.6.1 概述 | 第60页 |
| 1.6.2 药物的转运和转化 | 第60-62页 |
| 1.6.2.1 被动转运 | 第60-62页 |
| 1.6.2.2 主动转运 | 第62页 |
| 1.6.3 利用Caco-2细胞体外模型研究药物吸收 | 第62-68页 |
| 1.6.3.1 Caco-2 细胞体外模型 | 第62-64页 |
| 1.6.3.2 Caco-2 细胞模型在药物吸收研究中的应用 | 第64-68页 |
| 1.7 参考文献 | 第68-87页 |
| 第二章 刺五加中活性成分的提取和测定 | 第87-148页 |
| 2.1 中药刺五加的研究现状 | 第87-89页 |
| 2.1.1 刺五加中的化学成分 | 第87-88页 |
| 2.1.2 刺五加的药理作用 | 第88-89页 |
| 2.2 刺五加中总黄酮和总皂苷的提取 | 第89-104页 |
| 2.2.1 实验部分 | 第89-92页 |
| 2.2.1.1 仪器和设备 | 第89-90页 |
| 2.2.1.2 试剂和材料 | 第90页 |
| 2.2.1.3 实验方法 | 第90-92页 |
| 2.2.2 结果与讨论 | 第92-104页 |
| 2.2.2.1 乙醇浓度对提取产率和选择性的影响 | 第92-93页 |
| 2.2.2.2 提取压力对提取产率和选择性的影响 | 第93-95页 |
| 2.2.2.3 微波提取对时间对提取产率和选择性的影响 | 第95-97页 |
| 2.2.2.4 最佳微波提取条件的选择 | 第97-100页 |
| 2.2.2.5 刺五加叶中总黄酮和总皂苷提取方法比较 | 第100-104页 |
| 2.3 刺五加叶中黄酮类化合物的HPLC-MSn 研究 | 第104-118页 |
| 2.3.1 实验部分 | 第104-105页 |
| 2.3.1.1 仪器和设备 | 第104页 |
| 2.3.1.2 试剂和材料 | 第104-105页 |
| 2.3.1.3 实验方法 | 第105页 |
| 2.3.2 结果与讨论 | 第105-118页 |
| 2.3.2.1 刺五加提取液的HPLC-MSn 分析 | 第105-118页 |
| 2.3.2.2 HPLC 测定刺五加叶中黄酮类化合物的方法学评价 | 第118页 |
| 2.4 刺五加叶中黄酮类化合物在微波辅助提取过程中的化学变化 | 第118-127页 |
| 2.4.1 实验部分 | 第118-119页 |
| 2.4.1.1 仪器和设备 | 第118-119页 |
| 2.4.1.2 试剂和材料 | 第119页 |
| 2.4.1.3 实验方法 | 第119页 |
| 2.4.2 结果与讨论 | 第119-127页 |
| 2.4.2.1 溶剂对黄酮类化合物提取产率的影响 | 第119页 |
| 2.4.2.2 压力对黄酮类化合物提取产率和化学变化的影响 | 第119-121页 |
| 2.4.2.3 微波辅助提取时间对黄酮类化合物提取产率和化学变化的影响 | 第121-124页 |
| 2.4.2.4 微波辅助提取法与索氏提取法比较 | 第124-127页 |
| 2.5 刺五加叶中绿原酸的提取分离和表征 | 第127-144页 |
| 2.5.1 绿原酸的化学结构、提取分离方法和药理作用 | 第127页 |
| 2.5.2 实验部分 | 第127-129页 |
| 2.5.2.1 仪器和设备 | 第127-128页 |
| 2.5.2.2 试剂和材料 | 第128页 |
| 2.5.2.3 HPLC-UV、HPLC-DAD-MSn 、ESI-MSn、和NMR 实验条件 | 第128-129页 |
| 2.5.2.4 绿原酸的分离 | 第129页 |
| 2.5.2.5 绿原酸的制备 | 第129页 |
| 2.5.3 结果与讨论 | 第129-144页 |
| 2.5.3.1 各流分的HPLC-UV 分析 | 第129-133页 |
| 2.5.3.2 化合物X 的提取、分离和表征 | 第133-144页 |
| 2.6 结论 | 第144-145页 |
| 2.7 参考文献 | 第145-148页 |
| 第三章 淫羊藿中活性成分的提取和测定 | 第148-180页 |
| 3.1 中药淫羊藿的研究现状 | 第148-152页 |
| 3.1.1 淫羊藿属植物的化学成分 | 第148-150页 |
| 3.1.2 淫羊藿的药理研究进展 | 第150-152页 |
| 3.2 淫羊藿中黄酮类化合物的HPLC-MSn 法研究 | 第152-161页 |
| 3.2.1 实验部分 | 第152-153页 |
| 3.2.1.1 仪器和设备 | 第152页 |
| 3.2.1.2 试剂和材料 | 第152-153页 |
| 3.2.1.3 实验方法 | 第153页 |
| 3.2.2 结果与讨论 | 第153-161页 |
| 3.3 淫羊藿中总黄酮和淫羊藿苷的提取 | 第161-169页 |
| 3.3.1 实验部分 | 第161-163页 |
| 3.3.1.1 仪器设备 | 第161页 |
| 3.3.1.2 试剂和材料 | 第161页 |
| 3.3.1.3 样品制备及提取方法 | 第161-162页 |
| 3.3.1.4 样品的分析 | 第162-163页 |
| 3.3.2 结果与讨论 | 第163-169页 |
| 3.3.2.1 提取溶剂对提取产率和选择性的影响 | 第163-164页 |
| 3.3.2.2 提取压力对提取产率和选择性的影响 | 第164-165页 |
| 3.3.2.3 提取时间对提取产率和选择性的影响 | 第165-168页 |
| 3.3.2.4 不同提取方法比较 | 第168-169页 |
| 3.4 淫羊藿中黄酮类化合物提取过程中的化学变化 | 第169-174页 |
| 3.4.1 实验部分 | 第169页 |
| 3.4.1.1 仪器设备 | 第169页 |
| 3.4.1.2 试剂和材料 | 第169页 |
| 3.4.1.3 样品制备及提取方法 | 第169页 |
| 3.3.1.4 样品的测定 | 第169页 |
| 3.4.2 结果与讨论 | 第169-174页 |
| 3.4.2.1 溶剂对黄酮类化合物提取产率的影响 | 第170页 |
| 3.4.2.2 压力对黄酮类化合物提取产率及其化学变化的影响 | 第170-172页 |
| 3.4.2.3 提取时间对黄酮类化合物提取产率及其化学变化的影响 | 第172-174页 |
| 3.4.2.4 不同提取方法提取产率的比较 | 第174页 |
| 3.5 结论 | 第174-176页 |
| 3.6 参考文献 | 第176-180页 |
| 第四章 乌头类中药中生物碱在炮制和配伍过程中化学变化的研究 | 第180-211页 |
| 4.1 乌头类中药的化学成分 | 第180-181页 |
| 4.1.1 附子 | 第180页 |
| 4.1.2 草乌 | 第180-181页 |
| 4.2 乌头类中药的药理研究 | 第181-182页 |
| 4.2.1 附子的药理作用 | 第181-182页 |
| 4.2.2 草乌的药理作用 | 第182页 |
| 4.3 乌头类生物碱的减毒增效研究概况 | 第182-189页 |
| 4.3.1 炮制 | 第182-184页 |
| 4.3.2 配伍 | 第184-189页 |
| 4.4 加热对附子中生物碱类化合物的影响 | 第189-195页 |
| 4.4.1 实验部分 | 第189-190页 |
| 4.4.1.1 仪器与试剂 | 第189页 |
| 4.4.1.2 药材 | 第189页 |
| 4.4.1.3 实验方法 | 第189-190页 |
| 4.4.2 结果与讨论 | 第190-195页 |
| 4.4.2.1 HPLC-UV 谱图 | 第190-192页 |
| 4.4.2.2 标准曲线 | 第192页 |
| 4.4.2.3 加热过程中双酯类生物碱及其水解产物的变化 | 第192-195页 |
| 4.5 炮制对草乌中化学成分的影响 | 第195-199页 |
| 4.5.1 实验部分 | 第195页 |
| 4.5.1.1 仪器和试剂 | 第195页 |
| 4.5.1.2 实验方法 | 第195页 |
| 4.5.2 结果与讨论 | 第195-199页 |
| 4.5.2.1 优选草乌炮制方法 | 第195-199页 |
| 4.5.2.2 乌头类中药和草乌炮制品中生物碱含量比较 | 第199页 |
| 4.6 附子与其它中药配伍后的化学变化 | 第199-206页 |
| 4.6.1 实验部分 | 第199-200页 |
| 4.6.1.1 仪器和试剂 | 第199-200页 |
| 4.6.1.2 实验方法 | 第200页 |
| 4.6.2 结果与讨论 | 第200-206页 |
| 4.7 结论 | 第206-207页 |
| 4.8 参考文献 | 第207-211页 |
| 第五章 利用Caco-2 单细胞层模型研究黄酮类化合物的吸收 | 第211-231页 |
| 5.1 Caco-2 细胞模型 | 第211-212页 |
| 5.2 Caco-2 单层细胞模型的特点 | 第212页 |
| 5.3 细胞模型在中药吸收研究方面的应用 | 第212-214页 |
| 5.4 实验部分 | 第214-217页 |
| 5.4.1 仪器与试剂 | 第214页 |
| 5.4.2 实验方法 | 第214-217页 |
| 5.4.2.1 Caco-2 细胞的培养 | 第214-215页 |
| 5.4.2.2 单细胞层紧密性与完整性的检测 | 第215-216页 |
| 5.4.2.3 药物分子跨膜转运实验 | 第216页 |
| 5.4.2.4 样品的分析 | 第216-217页 |
| 5.4.3 结果与讨论 | 第217页 |
| 5.5 结论 | 第217页 |
| 5.6 参考文献 | 第217-231页 |
