| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 缩略词 | 第8-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 第一部分 p-AKT, GSK-3β 及Snail与肾母细胞瘤的发生发展及预后间的相关性研究 | 第15-24页 |
| 1 材料与方法 | 第15-17页 |
| 1.1 实验仪器 | 第15页 |
| 1.2 实验试剂 | 第15页 |
| 1.3 肾母细胞瘤组织切片 | 第15-16页 |
| 1.4 实验方法 | 第16-17页 |
| 1.4.1 收集肾母细胞瘤临床病理组织及切片 | 第16页 |
| 1.4.2 肾母细胞瘤肿瘤组织免疫组织化学染色分析 | 第16页 |
| 1.4.3 肾母细胞瘤临床病理指标评判 | 第16页 |
| 1.4.4 统计学方法 | 第16-17页 |
| 2 结果 | 第17-22页 |
| 2.1 收集肾母细胞瘤组织切片，探究各肿瘤标志物与肾母细胞瘤临床病理指标间的相关性 | 第17页 |
| 2.2 各肿瘤标志物间的相关性 | 第17页 |
| 2.3 各肿瘤标志物与肾母细胞瘤患者不良预后间的相关性 | 第17-22页 |
| 3 讨论 | 第22-24页 |
| 第二部分 肾母细胞瘤肿瘤干细胞的分选与鉴定 | 第24-37页 |
| 1 材料与方法 | 第24-28页 |
| 1.1 实验仪器 | 第24页 |
| 1.2 实验试剂 | 第24-25页 |
| 1.3 实验细胞 | 第25页 |
| 1.4 实验动物 | 第25页 |
| 1.5 常用溶液的配置 | 第25页 |
| 1.6 免疫磁珠分选装置 | 第25-26页 |
| 1.7 实验方法 | 第26-28页 |
| 1.7.1 肾母细胞瘤细胞株细胞（G401）培养 | 第26页 |
| 1.7.2 肾母细胞瘤干细胞分选前流式细胞仪检测 | 第26页 |
| 1.7.3 肾母细胞瘤干细胞免疫磁珠分选 | 第26-27页 |
| 1.7.4 肾母细胞瘤干细胞分选后流式细胞仪检测 | 第27页 |
| 1.7.5 肾母细胞瘤干细胞的体外鉴定 | 第27-28页 |
| 1.7.6 肾母细胞瘤干细胞的体内鉴定 | 第28页 |
| 2 结果 | 第28-35页 |
| 2.1 流式细胞仪检测肾母细胞瘤细胞系中肿瘤干细胞标志物的表达 | 第28-30页 |
| 2.2 CD133+肾母细胞瘤细胞具有更强的成球能力 | 第30页 |
| 2.3 CD133+肾母细胞瘤细胞具有更强的克隆形成能力 | 第30-31页 |
| 2.4 CD133+肾母细胞瘤细胞具有更强的侵袭转移能力 | 第31-33页 |
| 2.5 CD133+肾母细胞瘤细胞肿瘤干细胞相关基因表达水平更高 | 第33-34页 |
| 2.6 CD133+细胞在裸鼠体内的致瘤性 | 第34-35页 |
| 3 讨论 | 第35-37页 |
| 第三部分 STAT3对肾母细胞瘤肿瘤干细胞特性及凋亡的影响 | 第37-44页 |
| 1 材料与方法 | 第37-40页 |
| 1.1 实验仪器 | 第37页 |
| 1.2 实验试剂 | 第37-38页 |
| 1.3 常用溶液的配置 | 第38页 |
| 1.4 实验方法 | 第38-40页 |
| 1.4.1 MTT实验 | 第38页 |
| 1.4.2 Annexin V凋亡检测 | 第38-39页 |
| 1.4.3 Western Blot检测凋亡相关蛋白 | 第39页 |
| 1.4.4 体内实验观察抑制STAT3对肾母细胞瘤干细胞成瘤能力的影响 | 第39页 |
| 1.4.5 裸鼠瘤体HE染色 | 第39-40页 |
| 2 结果 | 第40-43页 |
| 2.1 MTT法检测Stattic有效抑制浓度 | 第40页 |
| 2.2 Annexin-V-FITC/PI双染检测Stattic促进了CD133+细胞的凋亡 | 第40-41页 |
| 2.3 Stattic有效抑制CD133+细胞所成瘤体的生长 | 第41-42页 |
| 2.4 肾母细胞瘤肿瘤组织HE染色情况 | 第42页 |
| 2.5 WesternBlot法检测STAT抑制剂能够有效抑制STAT3磷酸化，并促进了肾母细胞瘤CD133+细胞的凋亡 | 第42-43页 |
| 3 讨论 | 第43-44页 |
| 全文总结 | 第44-46页 |
| 参考文献 | 第46-52页 |
| 在学期间的研究成果 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
