| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 前言 | 第9-26页 |
| 1.1 油菜素甾醇(brassinosteroids,BRs) | 第9-18页 |
| 1.1.1 BR受体BRI1 | 第9-11页 |
| 1.1.2 BRs共受体BAK1 | 第11-15页 |
| 1.1.3 BR信号传导 | 第15-16页 |
| 1.1.4 BR合成网络 | 第16-18页 |
| 1.2 TCP1调控DWF4转录 | 第18-21页 |
| 1.3 TCP家族 | 第21-26页 |
| 1.3.1 TCP家族分类 | 第21-24页 |
| 1.3.2 TCP家族结合DNA序列研究 | 第24-26页 |
| 第二章 材料与方法 | 第26-49页 |
| 2.1 植物材料 | 第26-28页 |
| 2.1.1 植物培养条件 | 第26页 |
| 2.1.2 突变体构建 | 第26-28页 |
| 2.2 RNA提取及反转录cDNA | 第28-29页 |
| 2.2.1 提取RNA | 第28-29页 |
| 2.2.2 反转录cDNA | 第29页 |
| 2.3 各种PCR体系 | 第29-34页 |
| 2.3.1 普通PCR | 第29-30页 |
| 2.3.2 克隆基因 | 第30-31页 |
| 2.3.3 半定量Realtime PCR | 第31-34页 |
| 2.4 染色质免疫沉淀(chromatin immunoprecipitation,ChIP) | 第34-40页 |
| 2.4.1 植物材料准备及试剂配置 | 第34-37页 |
| 2.4.2 体外福尔马林交联样品 | 第37页 |
| 2.4.3 细胞核以及染色质分离 | 第37-38页 |
| 2.4.4 超声波破碎 | 第38页 |
| 2.4.5 免疫沉淀 | 第38-39页 |
| 2.4.6 解交联和DNA纯化 | 第39-40页 |
| 2.5 电泳迁移率实验(Electrophoretic Mobility Shift Assay,EMSA) | 第40-45页 |
| 2.5.1 TCP1蛋白质体外表达 | 第40-43页 |
| 2.5.2 DNA片段biotin标记 | 第43页 |
| 2.5.3 EMSA实验流程 | 第43-45页 |
| 2.6 基因芯片实验及数据分析 | 第45-49页 |
| 2.6.1 Microarray实验流程及数据获取 | 第46页 |
| 2.6.2 全基因组GGNCCC搜索和数据整合 | 第46-48页 |
| 2.6.3 高表达倍数基因验证 | 第48-49页 |
| 第三章 结果分析与讨论 | 第49-71页 |
| 3.1 TCP1调节DWF4表达 | 第49-52页 |
| 3.2 TCP1结合到DWF4的启动子区域 | 第52-54页 |
| 3.3 对TCP1结合序列的详细分析 | 第54-59页 |
| 3.4 全基因组芯片分析显示TCP1调节很多其他基因的表达 | 第59-62页 |
| 3.5 芯片数据的进一步分析 | 第62-67页 |
| 3.6 讨论 | 第67-71页 |
| 参考文献 | 第71-79页 |
| 附录 | 第79-119页 |
| 研究成果 | 第119-120页 |
| 个人简历 | 第120-121页 |
| 致谢 | 第121页 |
