| 符号说明 | 第5-11页 |
| 中文摘要 | 第11-13页 |
| Abstract | 第13-14页 |
| 1 前言 | 第15-37页 |
| 1.1 禽白血病病毒的研究进展 | 第15-23页 |
| 1.1.1 禽白血病病毒的分类地位 | 第16页 |
| 1.1.2 亚群分类 | 第16-17页 |
| 1.1.3 J亚群禽白血病病毒的形态学与理化特征 | 第17-18页 |
| 1.1.3.1 形态学特征 | 第17页 |
| 1.1.3.2 理化特征 | 第17-18页 |
| 1.1.4 J亚群禽白血病病毒的基因组结构及蛋白组成 | 第18-20页 |
| 1.1.4.1 gag/pro基因及编码蛋白 | 第18-19页 |
| 1.1.4.2 pol基因及编码蛋白 | 第19页 |
| 1.1.4.3 env基因及编码蛋白 | 第19页 |
| 1.1.4.4 UTR区 | 第19-20页 |
| 1.1.4.5 LTR区 | 第20页 |
| 1.1.5 J亚群禽白血病病毒的复制周期 | 第20-21页 |
| 1.1.6 流行病学特点 | 第21-22页 |
| 1.1.7 J亚群禽白血病病毒的致病性研究 | 第22页 |
| 1.1.8 ALV-J的诊断 | 第22页 |
| 1.1.9 ALV-J的预防 | 第22-23页 |
| 1.2 禽网状内皮组织增生症（REV）的研究进展 | 第23-29页 |
| 1.2.1 病原学 | 第23-25页 |
| 1.2.1.1 病毒分类及毒株分类 | 第23页 |
| 1.2.1.2 核酸及蛋白质组成 | 第23-24页 |
| 1.2.1.3 病毒复制 | 第24-25页 |
| 1.2.1.4 病毒稳定性 | 第25页 |
| 1.2.2 流行病学 | 第25-27页 |
| 1.2.2.1 水平传播途径 | 第25-26页 |
| 1.2.2.2 垂直传播途径 | 第26页 |
| 1.2.2.3 昆虫传播途径 | 第26页 |
| 1.2.2.4 疫苗污染途径 | 第26-27页 |
| 1.2.3 发病机理 | 第27页 |
| 1.2.4 临床及病理变化 | 第27-28页 |
| 1.2.4.1 病理变化 | 第27页 |
| 1.2.4.2 生长抑制综合征 | 第27-28页 |
| 1.2.5 诊断 | 第28页 |
| 1.2.5.1 病毒分离及鉴定 | 第28页 |
| 1.2.5.2 血清学检测 | 第28页 |
| 1.2.6 预防和控制 | 第28-29页 |
| 1.3 艾滋病研究进展 | 第29-36页 |
| 1.3.1 病原学 | 第29-30页 |
| 1.3.1.1 病毒分类及毒株分类 | 第29页 |
| 1.3.1.2 病毒结构及核酸和蛋白质组成 | 第29-30页 |
| 1.3.2 病毒的复制 | 第30-31页 |
| 1.3.3 艾滋病的临床药物治疗 | 第31-33页 |
| 1.3.3.1 药物作用靶点及作用原理 | 第31-32页 |
| 1.3.3.2 临床治疗药物和治疗方案 | 第32-33页 |
| 1.3.4 HIV逆转录酶及其抑制剂 | 第33-36页 |
| 1.3.4.1 逆转录酶及临床应用 | 第33页 |
| 1.3.4.2 核苷类逆转录酶抑制剂的作用机理 | 第33页 |
| 1.3.4.3 临床应用的HIV-1 核苷类逆转录酶抑制剂（NRTIs） | 第33-34页 |
| 1.3.4.4 齐多夫定（AZT） | 第34-35页 |
| 1.3.4.5 拉米夫定（LAM） | 第35-36页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第36-37页 |
| 2 材料与方法 | 第37-46页 |
| 2.1 试验材料 | 第37-38页 |
| 2.1.1 毒株和细胞 | 第37页 |
| 2.1.2 试验动物 | 第37页 |
| 2.1.3 主要试剂和试剂盒 | 第37-38页 |
| 2.1.4 实验主要使用的药物 | 第38页 |
| 2.2 方法 | 第38-46页 |
| 2.2.1 不同药物浓度的配制方法 | 第38页 |
| 2.2.2 连续传代法确定DF-1 细胞复制无影响的药物浓度 | 第38页 |
| 2.2.3 CCK-8 测定药物对DF-1 细胞活性的影响 | 第38-39页 |
| 2.2.4 不同药物浓度对ALV-J在DF-1 细胞复制的抑制作用 | 第39-40页 |
| 2.2.5 Reed-Muench法方法测定TCID50 | 第40页 |
| 2.2.6 NX0101株在药物选择压下的连续传代 | 第40页 |
| 2.2.7 NX0101株在药物选择压下的耐药性形成的验证 | 第40-41页 |
| 2.2.8 不同药物浓度对海兰褐鸡生产性能的影响 | 第41页 |
| 2.2.9 血凝血抑测定抗体滴度 | 第41-42页 |
| 2.2.10 不同药物浓度对ALV-J在海兰褐鸡体内复制的抑制作用 | 第42页 |
| 2.2.11 不同药物浓度对REV在DF-1 细胞上复制的抑制作用 | 第42-43页 |
| 2.2.12 疫苗毒种中REV污染去除（洁净性）的检验 | 第43页 |
| 2.2.13 药物干预后毒种接种SPF鸡的检验 | 第43页 |
| 2.2.14 ELLISA测定血清中REV抗体 | 第43-44页 |
| 2.2.15 间接免疫荧光实验： | 第44-46页 |
| 3 结果 | 第46-54页 |
| 3.1 AZT对ALV-J在体内和体外的抑制作用 | 第46-50页 |
| 3.1.1 不同AZT添加浓度对DF-1 细胞复制的影响 | 第46页 |
| 3.1.2 不同AZT添加浓度对DF-1 细胞活性的影响 | 第46-47页 |
| 3.1.3 不同AZT添加浓度对ALV-J在DF-1 细胞复制的抑制作用 | 第47-48页 |
| 3.1.4 不同浓度AZT对海兰褐鸡生产性能的影响 | 第48-49页 |
| 3.1.5 不同药物浓度对NDV和AIV-H9免疫后抗体反应的影响 | 第49-50页 |
| 3.1.6 不同剂量AZT对ALV-J在海兰褐鸡内复制的抑制作用 | 第50页 |
| 3.2 在药物选择压下ALV-J耐药毒株的形成 | 第50-52页 |
| 3.2.1 第50代不同传代系耐药性形成的验证 | 第50-52页 |
| 3.3 利用逆转录酶抑制剂类药物去除疫苗中的REV污染 | 第52-54页 |
| 3.3.1 不同浓度AZT和LAM对REV在细胞复制的抑制作用 | 第52页 |
| 3.3.2 AZT和LAM单独或联合应用去除疫苗毒种中REV污染 | 第52-53页 |
| 3.3.3 IFA检测净化后疫苗毒种中REV | 第53页 |
| 3.3.4 SPF鸡接种法检测净化后疫苗毒种中REV污染 | 第53-54页 |
| 4 讨论 | 第54-57页 |
| 5 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第65页 |
