目录 | 第1-8页 |
中文摘要 | 第8-11页 |
英文摘要 | 第11-15页 |
第一章 文献综述 | 第15-36页 |
1.1 大麦β-葡聚糖的结构和性质 | 第15-17页 |
1.2 麦芽中水解大麦β-葡聚糖的相关酶系 | 第17-20页 |
1.2.1 1,3-1,4-β-葡聚糖内水解酶 | 第17-19页 |
1.2.2 1,3-1,4-β-葡聚糖外水解酶 | 第19-20页 |
1.2.3 大麦β-葡聚糖酶分子结构及活性位点的确定 | 第20页 |
1.3 阿拉伯木聚糖水解酶 | 第20-21页 |
1.4 大麦β-葡聚糖的负面影响 | 第21页 |
1.4.1 大麦β-葡聚糖对啤酒酿造的影响 | 第21页 |
1.4.2 大麦β-葡聚糖在饲料中的抗营养性 | 第21页 |
1.5 β-葡聚糖酶研究概况 | 第21-23页 |
1.6 微生物性β-1,3-1,4-葡聚糖酶研究进展 | 第23-28页 |
1.6.1 产1,3-1,4-β-葡聚糖酶的微生物及酶基因结构 | 第23-24页 |
1.6.2 芽孢杆菌内β-1,3-1,4-葡聚糖酶诱导性表达机理 | 第24-25页 |
1.6.3 β-1,3-1,4-葡聚糖酶催化水解机理 | 第25-27页 |
1.6.4 酶基因的外源性表达 | 第27-28页 |
1.6.5 1,3-1,4-β-葡聚糖酶热稳定性研究 | 第28页 |
1.7 选题依据和达到的预期目标 | 第28-29页 |
参考文献 | 第29-36页 |
第二章 热稳定性β-葡聚糖酶菌种选育及产酶条件研究 | 第36-56页 |
2.1 材料与方法 | 第36-39页 |
2.2 结果与分析 | 第39-41页 |
2.2.1 菌种分离与筛选 | 第39-40页 |
2.2.2 菌种鉴定 | 第40-41页 |
2.2.3 菌种选育 | 第41页 |
2.3 B. subtilis ZJF-1A5β-葡聚糖酶产酶特性的研究 | 第41-53页 |
2.3.1 碳源对B. subtilis ZJF-1A5产β-聚糖酶的影响 | 第41-43页 |
2.3.2 氮源对B. subtilis ZJF-1A5产β-葡聚糖酶的影响 | 第43-44页 |
2.3.3 KH_2PO_4浓度对β-葡聚糖酶产生的影响 | 第44-45页 |
2.3.4 MgSO_4·7H_2O浓度对β-葡聚糖酶产生的影响 | 第45页 |
2.3.5 CaCl2浓度对β-葡聚糖酶产生的影响 | 第45-46页 |
2.3.6 起始pH对β-葡聚糖酶产生的影响 | 第46页 |
2.3.7 装液量对β-葡聚糖酶产生的影响 | 第46-47页 |
2.3.8 β-葡聚糖对β-葡聚糖酶的诱导作用 | 第47页 |
2.3.9 发酵培养基的优化 | 第47-53页 |
2.4 B subtilis ZJF-1A5发酵产酶过程 | 第53页 |
2.5 结论与讨论 | 第53-55页 |
参考文献 | 第55-56页 |
第三章 热稳定性β-葡聚糖酶纯化、酶学性质及酶促反应动力学 | 第56-70页 |
3.1 材料与方法 | 第56-57页 |
3.2 结果与分析 | 第57-68页 |
3.2.1 硫酸铵分步盐析浓度的确定 | 第57-58页 |
3.2.2 β-1,3-1,4-葡聚糖酶纯化 | 第58-59页 |
3.2.3 β-葡聚糖酶的性质 | 第59-64页 |
3.2.4 金属离子对β-1,3-1,4-葡聚糖酶活性的影响 | 第64页 |
3.2.5 酶促反应动力学 | 第64-68页 |
3.3 结论与讨论 | 第68-69页 |
参考文献 | 第69-70页 |
第四章 淀粉质原料发酵培养基和发酵条件的优化研究 | 第70-89页 |
4.1 材料与方法 | 第70页 |
4.2 结果与分析 | 第70-86页 |
4.2.1 发酵培养基的优化 | 第70-75页 |
4.2.1.1 部分因子试验设计及结果 | 第70-72页 |
4.2.1.2 最陡爬坡试验 | 第72-73页 |
4.2.1.3 中心组合试验 | 第73-75页 |
4.2.2 种子培养基的优化 | 第75-80页 |
4.2.2.1 部分因子试验 | 第75-76页 |
4.2.2.2 最陡爬坡试验 | 第76-77页 |
4.2.2.3 中心组合试验设计 | 第77-79页 |
4.2.2.4 优化后的种子培养基接种效果 | 第79-80页 |
4.2.3 培养条件优化 | 第80-85页 |
4.2.3.1 发酵培养温度对β-葡聚糖酶产生的影响 | 第80-81页 |
4.2.3.2 氧载体对β-葡聚糖酶产酶水平的影响 | 第81-82页 |
4.2.3.3 半部分因子试验 | 第82-84页 |
4.2.3.4 中心组合设计 | 第84-85页 |
4.2.4 B. subtilis ZJF-1A5发酵产酶过程 | 第85-86页 |
4.3 结论与讨论 | 第86-88页 |
参考文献 | 第88-89页 |
第五章 枯草芽孢杆菌β-葡聚糖酶分批发酵工艺及发酵动力学 | 第89-101页 |
5.1 材料与方法 | 第89-90页 |
5.2 结果与讨论 | 第90-99页 |
5.2.1 搅拌速率对B. subtilis ZJF-1A5发酵产酶的影响 | 第90-93页 |
5.2.2 发酵动力学模型 | 第93-97页 |
5.2.2.1 生长曲线及代谢规律分析 | 第93-94页 |
5.2.2.2 细胞生长动力学 | 第94-95页 |
5.2.2.3 基质消耗动力学 | 第95页 |
5.2.2.4 产酶动力学 | 第95-97页 |
5.2.3 中试放大 | 第97-99页 |
5.2.3.1 空气流量的放大 | 第97-98页 |
5.2.3.2 搅拌功率和搅拌转速的放大 | 第98页 |
5.2.3.3 70L分批发酵结果 | 第98-99页 |
5.3 结论与讨论 | 第99-100页 |
参考文献 | 第100-101页 |
第六章 双水相体系分离纯化β-葡聚糖酶的研究 | 第101-117页 |
6.1 材料与方法 | 第102-104页 |
6.2 结果与讨论 | 第104-114页 |
6.2.1 PEG成相盐及相图 | 第104-105页 |
6.2.2 PEG/磷酸盐体系 | 第105-110页 |
6.2.2.1 PEG相对分子量对萃取的影响 | 第105-106页 |
6.2.2.2 PEG6000浓度对萃取的影响 | 第106页 |
6.2.2.3 NaH_2PO_4-K_2HPO_4浓度对萃取的影响 | 第106-107页 |
6.2.2.4 pH对萃取的影响 | 第107-108页 |
6.2.2.5 NaCl浓度对萃取的影响 | 第108-109页 |
6.2.2.6 芽孢杆菌ZJF-1A5全发酵液中酶的分配行为 | 第109-110页 |
6.2.2.7 β-葡聚糖酶的反萃 | 第110页 |
6.2.3 PEG/MgSO_4体系 | 第110-114页 |
6.2.3.1 PEG相对分子量对β-1,3-1,4-葡聚糖酶萃取的影响 | 第110-111页 |
6.2.3.2 PEG2000浓度对β-葡聚糖酶萃取的影响 | 第111页 |
6.2.3.3 MgSO_4浓度对β-葡聚糖酶分配和萃取的影响 | 第111-112页 |
6.2.3.4 pH对酶分配和萃取的影响 | 第112页 |
6.2.3.5 NaCl浓度对酶分配和萃取的影响 | 第112-113页 |
6.2.3.6 枯草芽孢杆菌ZJF-1A5全发酵液中酶的分配 | 第113-114页 |
6.2.3.7 β-葡聚糖酶的反萃 | 第114页 |
6.3 结论与讨论 | 第114-115页 |
参考文献 | 第115-117页 |
第七章 啤酒复合酶在啤酒糖化工艺中的应用性研究 | 第117-129页 |
7.1 材料与方法 | 第117-118页 |
7.2 结果与分析 | 第118-127页 |
7.2.1 啤酒用复合酶制剂的制备 | 第118-120页 |
7.2.1.1 硅藻土对发酵液过滤的影响 | 第118页 |
7.2.1.2 无机盐凝聚沉淀 | 第118-120页 |
7.2.2 复合酶在糖化中应用效果 | 第120-123页 |
7.2.2.1 复合酶对麦芽糖化的影响 | 第120-122页 |
7.2.2.2 复合酶加酶量对糖化的影响 | 第122-123页 |
7.2.3 复合酶对麦汁中β-葡聚糖降解的动力学研究 | 第123-127页 |
7.2.3.1 pH对复合酶降解β-葡聚糖的影响 | 第123-124页 |
7.2.3.2 温度对β-葡聚糖酶降解β-葡聚糖的影响 | 第124-125页 |
7.2.3.3 β-葡聚糖酶添加量对降解β-葡聚糖的影响 | 第125-127页 |
7.3 结论与讨论 | 第127-128页 |
参考文献 | 第128-129页 |
第八章 结论与展望 | 第129-135页 |
致谢 | 第135-136页 |
攻读博士学位期间撰写的论文 | 第136页 |