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热稳定性β-葡聚糖酶发酵工艺及发酵动力学研究

目录第1-8页
中文摘要第8-11页
英文摘要第11-15页
第一章 文献综述第15-36页
 1.1 大麦β-葡聚糖的结构和性质第15-17页
 1.2 麦芽中水解大麦β-葡聚糖的相关酶系第17-20页
  1.2.1 1,3-1,4-β-葡聚糖内水解酶第17-19页
  1.2.2 1,3-1,4-β-葡聚糖外水解酶第19-20页
  1.2.3 大麦β-葡聚糖酶分子结构及活性位点的确定第20页
 1.3 阿拉伯木聚糖水解酶第20-21页
 1.4 大麦β-葡聚糖的负面影响第21页
  1.4.1 大麦β-葡聚糖对啤酒酿造的影响第21页
  1.4.2 大麦β-葡聚糖在饲料中的抗营养性第21页
 1.5 β-葡聚糖酶研究概况第21-23页
 1.6 微生物性β-1,3-1,4-葡聚糖酶研究进展第23-28页
  1.6.1 产1,3-1,4-β-葡聚糖酶的微生物及酶基因结构第23-24页
  1.6.2 芽孢杆菌内β-1,3-1,4-葡聚糖酶诱导性表达机理第24-25页
  1.6.3 β-1,3-1,4-葡聚糖酶催化水解机理第25-27页
  1.6.4 酶基因的外源性表达第27-28页
  1.6.5 1,3-1,4-β-葡聚糖酶热稳定性研究第28页
 1.7 选题依据和达到的预期目标第28-29页
 参考文献第29-36页
第二章 热稳定性β-葡聚糖酶菌种选育及产酶条件研究第36-56页
 2.1 材料与方法第36-39页
 2.2 结果与分析第39-41页
  2.2.1 菌种分离与筛选第39-40页
  2.2.2 菌种鉴定第40-41页
  2.2.3 菌种选育第41页
 2.3 B. subtilis ZJF-1A5β-葡聚糖酶产酶特性的研究第41-53页
  2.3.1 碳源对B. subtilis ZJF-1A5产β-聚糖酶的影响第41-43页
  2.3.2 氮源对B. subtilis ZJF-1A5产β-葡聚糖酶的影响第43-44页
  2.3.3 KH_2PO_4浓度对β-葡聚糖酶产生的影响第44-45页
  2.3.4 MgSO_4·7H_2O浓度对β-葡聚糖酶产生的影响第45页
  2.3.5 CaCl2浓度对β-葡聚糖酶产生的影响第45-46页
  2.3.6 起始pH对β-葡聚糖酶产生的影响第46页
  2.3.7 装液量对β-葡聚糖酶产生的影响第46-47页
  2.3.8 β-葡聚糖对β-葡聚糖酶的诱导作用第47页
  2.3.9 发酵培养基的优化第47-53页
 2.4 B subtilis ZJF-1A5发酵产酶过程第53页
 2.5 结论与讨论第53-55页
 参考文献第55-56页
第三章 热稳定性β-葡聚糖酶纯化、酶学性质及酶促反应动力学第56-70页
 3.1 材料与方法第56-57页
 3.2 结果与分析第57-68页
  3.2.1 硫酸铵分步盐析浓度的确定第57-58页
  3.2.2 β-1,3-1,4-葡聚糖酶纯化第58-59页
  3.2.3 β-葡聚糖酶的性质第59-64页
  3.2.4 金属离子对β-1,3-1,4-葡聚糖酶活性的影响第64页
  3.2.5 酶促反应动力学第64-68页
 3.3 结论与讨论第68-69页
 参考文献第69-70页
第四章 淀粉质原料发酵培养基和发酵条件的优化研究第70-89页
 4.1 材料与方法第70页
 4.2 结果与分析第70-86页
  4.2.1 发酵培养基的优化第70-75页
   4.2.1.1 部分因子试验设计及结果第70-72页
   4.2.1.2 最陡爬坡试验第72-73页
   4.2.1.3 中心组合试验第73-75页
  4.2.2 种子培养基的优化第75-80页
   4.2.2.1 部分因子试验第75-76页
   4.2.2.2 最陡爬坡试验第76-77页
   4.2.2.3 中心组合试验设计第77-79页
   4.2.2.4 优化后的种子培养基接种效果第79-80页
  4.2.3 培养条件优化第80-85页
   4.2.3.1 发酵培养温度对β-葡聚糖酶产生的影响第80-81页
   4.2.3.2 氧载体对β-葡聚糖酶产酶水平的影响第81-82页
   4.2.3.3 半部分因子试验第82-84页
   4.2.3.4 中心组合设计第84-85页
  4.2.4 B. subtilis ZJF-1A5发酵产酶过程第85-86页
 4.3 结论与讨论第86-88页
 参考文献第88-89页
第五章 枯草芽孢杆菌β-葡聚糖酶分批发酵工艺及发酵动力学第89-101页
 5.1 材料与方法第89-90页
 5.2 结果与讨论第90-99页
  5.2.1 搅拌速率对B. subtilis ZJF-1A5发酵产酶的影响第90-93页
  5.2.2 发酵动力学模型第93-97页
   5.2.2.1 生长曲线及代谢规律分析第93-94页
   5.2.2.2 细胞生长动力学第94-95页
   5.2.2.3 基质消耗动力学第95页
   5.2.2.4 产酶动力学第95-97页
  5.2.3 中试放大第97-99页
   5.2.3.1 空气流量的放大第97-98页
   5.2.3.2 搅拌功率和搅拌转速的放大第98页
   5.2.3.3 70L分批发酵结果第98-99页
 5.3 结论与讨论第99-100页
 参考文献第100-101页
第六章 双水相体系分离纯化β-葡聚糖酶的研究第101-117页
 6.1 材料与方法第102-104页
 6.2 结果与讨论第104-114页
  6.2.1 PEG成相盐及相图第104-105页
  6.2.2 PEG/磷酸盐体系第105-110页
   6.2.2.1 PEG相对分子量对萃取的影响第105-106页
   6.2.2.2 PEG6000浓度对萃取的影响第106页
   6.2.2.3 NaH_2PO_4-K_2HPO_4浓度对萃取的影响第106-107页
   6.2.2.4 pH对萃取的影响第107-108页
   6.2.2.5 NaCl浓度对萃取的影响第108-109页
   6.2.2.6 芽孢杆菌ZJF-1A5全发酵液中酶的分配行为第109-110页
   6.2.2.7 β-葡聚糖酶的反萃第110页
  6.2.3 PEG/MgSO_4体系第110-114页
   6.2.3.1 PEG相对分子量对β-1,3-1,4-葡聚糖酶萃取的影响第110-111页
   6.2.3.2 PEG2000浓度对β-葡聚糖酶萃取的影响第111页
   6.2.3.3 MgSO_4浓度对β-葡聚糖酶分配和萃取的影响第111-112页
   6.2.3.4 pH对酶分配和萃取的影响第112页
   6.2.3.5 NaCl浓度对酶分配和萃取的影响第112-113页
   6.2.3.6 枯草芽孢杆菌ZJF-1A5全发酵液中酶的分配第113-114页
   6.2.3.7 β-葡聚糖酶的反萃第114页
 6.3 结论与讨论第114-115页
 参考文献第115-117页
第七章 啤酒复合酶在啤酒糖化工艺中的应用性研究第117-129页
 7.1 材料与方法第117-118页
 7.2 结果与分析第118-127页
  7.2.1 啤酒用复合酶制剂的制备第118-120页
   7.2.1.1 硅藻土对发酵液过滤的影响第118页
   7.2.1.2 无机盐凝聚沉淀第118-120页
  7.2.2 复合酶在糖化中应用效果第120-123页
   7.2.2.1 复合酶对麦芽糖化的影响第120-122页
   7.2.2.2 复合酶加酶量对糖化的影响第122-123页
  7.2.3 复合酶对麦汁中β-葡聚糖降解的动力学研究第123-127页
   7.2.3.1 pH对复合酶降解β-葡聚糖的影响第123-124页
   7.2.3.2 温度对β-葡聚糖酶降解β-葡聚糖的影响第124-125页
   7.2.3.3 β-葡聚糖酶添加量对降解β-葡聚糖的影响第125-127页
 7.3 结论与讨论第127-128页
 参考文献第128-129页
第八章 结论与展望第129-135页
致谢第135-136页
攻读博士学位期间撰写的论文第136页

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