| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-13页 |
| 1 绪论 | 第13-31页 |
| ·花色苷的结构及种类 | 第13-15页 |
| ·花色苷的理化性质 | 第15-16页 |
| ·花色苷的生理活性 | 第16-18页 |
| ·花色苷生物合成相关基因 | 第18-29页 |
| ·花色苷生物合成的结构基因 | 第19-25页 |
| ·花色苷生物合成的调节基因 | 第25-27页 |
| ·影响花色苷生物合成的因素 | 第27-29页 |
| ·天然色素花色苷类的应用前景 | 第29页 |
| ·我国山葡萄资源 | 第29-30页 |
| ·本课题研究的目的和意义 | 第30-31页 |
| 2 山葡萄RNA的提取 | 第31-37页 |
| ·材料与方法 | 第31-33页 |
| ·试验材料 | 第31页 |
| ·试验方法 | 第31-33页 |
| ·结果分析 | 第33-35页 |
| ·RNA提取 | 第33-35页 |
| ·讨论 | 第35-36页 |
| ·本章小结 | 第36-37页 |
| 3 山葡萄转色期果皮cDNA文库的构建与分析 | 第37-49页 |
| ·材料与方法 | 第37-41页 |
| ·试验材料 | 第37页 |
| ·试验方法 | 第37-41页 |
| ·结果与分析 | 第41-46页 |
| ·总RNA的提取 | 第41-42页 |
| ·ds cDNA的合成 | 第42页 |
| ·山葡萄的cDNA分级分离 | 第42-43页 |
| ·cDNA文库的质量评价 | 第43页 |
| ·cDNA文库的基本特征 | 第43-44页 |
| ·功能分类和基因表达谱分析 | 第44-46页 |
| ·讨论 | 第46-47页 |
| ·本章小结 | 第47-49页 |
| 4 山葡萄花色苷生物合成相关结构基因的克隆与序列分析 | 第49-81页 |
| ·材料与方法 | 第49-57页 |
| ·试验材料 | 第49页 |
| ·试验方法 | 第49-57页 |
| ·结果分析 | 第57-78页 |
| ·类黄酮3'-羟化酶基因(F3'H)cDNA的克隆和分析 | 第57-61页 |
| ·类黄酮3',5'-羟化酶基因(F3'5'H)cDNA的克隆和分析 | 第61-64页 |
| ·黄烷酮醇4-还原酶基因(DFR)cDNA的克隆和分析 | 第64-67页 |
| ·无色花色素双加氧酶基因(LDOX)cDNA的克隆和分析 | 第67-70页 |
| ·UDP葡萄糖-类黄酮3-O-葡萄糖基转移酶基因(3GT)cDNA的克隆和分析 | 第70-72页 |
| ·O-甲基转移酶基因(OMT)cDNA的克隆和分析 | 第72-74页 |
| ·谷胱甘肽S-转移酶基因(GST)cDNA的克隆和分析 | 第74-77页 |
| ·UDP葡萄糖-类黄酮5-O-葡萄糖基转移酶基因(5GT)cDNA的克隆和分析 | 第77-78页 |
| ·讨论 | 第78-80页 |
| ·本章小结 | 第80-81页 |
| 5 山葡萄花色苷合成相关基因表达研究 | 第81-90页 |
| ·材料与方法 | 第81-85页 |
| ·实验材料 | 第81页 |
| ·实验方法 | 第81-85页 |
| ·结果与分析 | 第85-88页 |
| ·半定量RT-PCR | 第85-86页 |
| ·Northern blot结果与分析 | 第86-88页 |
| ·讨论 | 第88-89页 |
| ·本章小结 | 第89-90页 |
| 6 重组3GT和5GT在E.coli M15中的表达和纯化 | 第90-97页 |
| ·材料与方法 | 第90-93页 |
| ·试验材料 | 第90页 |
| ·试验方法 | 第90-93页 |
| ·结果与分析 | 第93-95页 |
| ·原核表达载体pQE30 Xa-VAmGTs构建和转化 | 第93-94页 |
| ·重组融合蛋白在E.coli M15中的表达 | 第94-95页 |
| ·重组融合蛋白的纯化 | 第95页 |
| ·讨论 | 第95-96页 |
| ·本章小结 | 第96-97页 |
| 结论 | 第97-99页 |
| 参考文献 | 第99-111页 |
| 附录 | 第111-113页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第113-114页 |
| 致谢 | 第114-115页 |
