摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
1 文献综述 | 第11-15页 |
1.1 胞膜窖与窖蛋白-1 | 第11-12页 |
1.2 窖蛋白在脑缺血中的保护作用 | 第12页 |
1.3 胞膜窖与脑缺血促存活信号通路 | 第12-14页 |
1.3.1 胞膜窖与MAPK/ERK信号通路 | 第12-13页 |
1.3.2 胞膜窖与PI3K/Akt信号通路 | 第13页 |
1.3.3 胞膜窖与自噬和凋亡信号通路 | 第13-14页 |
1.4 本论文的研究意义 | 第14页 |
1.5 论文的主要研究内容 | 第14-15页 |
2 窖蛋白-1 在PC12细胞葡萄糖剥夺损伤中的作用 | 第15-29页 |
2.1 前言 | 第15页 |
2.2 材料与仪器 | 第15-17页 |
2.2.1 材料与试剂 | 第15-16页 |
2.2.2 实验仪器 | 第16-17页 |
2.3 实验方法 | 第17-22页 |
2.3.1 细胞培养 | 第17-18页 |
2.3.2 葡萄糖剥夺 | 第18页 |
2.3.3 细胞存活率分析 | 第18页 |
2.3.4 蛋白的提取与定量 | 第18-19页 |
2.3.5 免疫印迹 | 第19-21页 |
2.3.6 免疫细胞荧光 | 第21页 |
2.3.7 流式细胞术 | 第21页 |
2.3.8 统计学分析 | 第21-22页 |
2.4 实验结果 | 第22-26页 |
2.4.1 窖蛋白-1 在不同神经细胞中的表达 | 第22页 |
2.4.2 葡萄糖剥夺不同时间对PC12细胞中窖蛋白-1 蛋白表达影响 | 第22-23页 |
2.4.3 葡萄糖剥夺对PC12细胞中窖蛋白-1 和Glut-4 蛋白表达及分布的影响 | 第23-24页 |
2.4.4 敲低窖蛋白-1 对葡萄糖剥夺引起PC12细胞损伤的影响 | 第24-26页 |
2.5 讨论 | 第26-28页 |
2.6 小结 | 第28-29页 |
3 窖蛋白-1 在葡萄糖剥夺诱导PC12细胞的自噬中的作用 | 第29-42页 |
3.1 前言 | 第29页 |
3.2 材料与仪器 | 第29-30页 |
3.2.1 材料与试剂 | 第29-30页 |
3.2.2 实验仪器 | 第30页 |
3.3 实验方法 | 第30-31页 |
3.3.1 细胞培养 | 第30页 |
3.3.2 葡萄糖剥夺 | 第30页 |
3.3.3 细胞存活率分析 | 第30页 |
3.3.4 吖啶橙染色 | 第30-31页 |
3.3.5 蛋白的提取与定量 | 第31页 |
3.3.6 免疫印迹 | 第31页 |
3.3.7 免疫细胞荧光 | 第31页 |
3.3.8 统计学分析 | 第31页 |
3.4 实验结果 | 第31-39页 |
3.4.1 窖蛋白-1 对PC12细胞葡萄糖剥夺诱导自噬的影响 | 第31-34页 |
3.4.2 敲低窖蛋白-1 对PC12细胞葡萄糖剥夺诱导自噬的影响 | 第34-37页 |
3.4.3 甲基化-β-环化糊精对葡萄糖剥夺诱导的PC12细胞自噬的影响 | 第37-38页 |
3.4.4 窖蛋白-1 挽救时对葡萄糖剥夺诱导自噬的影响 | 第38-39页 |
3.5 讨论 | 第39-41页 |
3.6 小结 | 第41-42页 |
4 窖蛋白-1 促进葡萄糖剥夺诱导自噬的信号转导机制 | 第42-48页 |
4.1 前言 | 第42页 |
4.2 材料与仪器 | 第42-43页 |
4.2.1 材料与试剂 | 第42-43页 |
4.2.2 实验仪器 | 第43页 |
4.3 实验方法 | 第43-44页 |
4.3.1 细胞培养 | 第43页 |
4.3.2 葡萄糖剥夺 | 第43页 |
4.3.3 蛋白的提取与定量 | 第43页 |
4.3.4 免疫印迹 | 第43页 |
4.3.5 统计学分析 | 第43-44页 |
4.4 实验结果 | 第44-46页 |
4.4.1 葡萄糖剥夺对两种细胞Akt/mTOR通路激活的影响 | 第44页 |
4.4.2 自噬抑制剂对两种细胞Akt/mTOR蛋白磷酸化的影响 | 第44-46页 |
4.5 讨论 | 第46-47页 |
4.6 小结 | 第47-48页 |
结论 | 第48页 |
论文创新点 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-55页 |
附录A 缩略语表 | 第55-56页 |
攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第56-57页 |
致谢 | 第57页 |