| 摘要 | 第4-14页 |
| Abstract | 第14-25页 |
| 英文缩略词 | 第26-32页 |
| 引言 | 第32-35页 |
| 第一章 姜提取物抑制结肠癌细胞的锚定非依赖性生长及细胞增殖 | 第35-45页 |
| 1 材料与方法 | 第35-40页 |
| 1.1 仪器设备 | 第35页 |
| 1.2 材料和试剂 | 第35-36页 |
| 1.3 常用试剂配制 | 第36页 |
| 1.4 实验方法 | 第36-40页 |
| 2 结果 | 第40-45页 |
| 2.1 合成高纯度的姜提取物 | 第40页 |
| 2.2 姜提取物对正常结肠上皮细胞HCEC没有毒性 | 第40-41页 |
| 2.3 姜提取物能够抑制结肠癌细胞的锚定非依赖性生长 | 第41-43页 |
| 2.4 姜提取物能够抑制结肠癌细胞的增殖 | 第43-45页 |
| 第二章 姜提取物诱导结肠癌细胞的凋亡和调控细胞的周期 | 第45-55页 |
| 1 材料与方法 | 第45-50页 |
| 1.1 主要仪器设备 | 第45-46页 |
| 1.2 主要材料和试剂 | 第46页 |
| 1.3 常用试剂配制 | 第46-47页 |
| 1.4 试验方法 | 第47-50页 |
| 2 结果 | 第50-55页 |
| 2.1 姜提取物能够诱导结肠癌细胞凋亡 | 第50-52页 |
| 2.2 姜提取物能够调控结肠癌细胞的周期 | 第52页 |
| 2.3 姜提取物引起凋亡相关蛋白的改变 | 第52-53页 |
| 2.4 姜提取物引起细胞周期相关蛋白的改变 | 第53-55页 |
| 第三章 LTA4H和AKT在人结肠癌组织和结肠癌细胞中高表达 | 第55-63页 |
| 1 材料与方法 | 第55-60页 |
| 1.1 主要仪器设备 | 第55-56页 |
| 1.2 主要材料和试剂 | 第56-57页 |
| 1.3 常用试剂配制 | 第57页 |
| 1.4 试验方法 | 第57-60页 |
| 2 结果 | 第60-63页 |
| 2.1 与正常结肠上皮细胞相比,LTA4H和AKT在结肠癌细胞系中高表达 | 第60-61页 |
| 2.2 与结肠癌癌旁正常组织相比,LTA4H和AKT在结肠癌组织中高表达 | 第61-62页 |
| 2.3 姜提取物能够抑制LTA4H下游BLT1、P-ERK和AKT下游P-stat3的磷酸化水平 | 第62-63页 |
| 第四章 姜提取物体内外同时抑制DLD1和AKT激酶活性 | 第63-76页 |
| 1 材料与方法 | 第64-69页 |
| 1.1 主要仪器设备 | 第64页 |
| 1.2 主要材料和试剂 | 第64页 |
| 1.3 常用试剂配制 | 第64-65页 |
| 1.4 实验方法 | 第65-69页 |
| 2 结果 | 第69-76页 |
| 2.1 计算机对接模型中Gingerextract与LTA4H及AKT蛋白的ATP结合区域结合 | 第69-71页 |
| 2.2 分子动力学模拟Gingerextract与LTA4H及AKT的相互作用 | 第71-74页 |
| 2.3 细胞水平蛋白下拉实验 | 第74-76页 |
| 第五章 下调LTA4H和AKT的表达能够抑制结肠癌细胞DLD1的克隆形成和细胞增殖,同时促进结肠癌细胞的凋亡,调控细胞周期 | 第76-94页 |
| 1 材料与方法 | 第76-85页 |
| 1.1 主要仪器设备 | 第76页 |
| 1.2 主要材料和试剂 | 第76-77页 |
| 1.3 常用试剂配制 | 第77页 |
| 1.4 实验方法 | 第77-85页 |
| 1.5 统计学处理 | 第85页 |
| 2 结果 | 第85-94页 |
| 2.1 用shRNA | 第85-86页 |
| 2.2 下调 LTA4H和 AKT1的表达水平后，shRNA | 第86-87页 |
| 2.3 下调 LTA4H 和 AKT1 的表达水平后，shRNA | 第87-88页 |
| 2.4 下调 LTA4H 和 AKT1 的表达水平后，shRNA | 第88-89页 |
| 2.5 下调 LTA4H 和 AKT1 的表达水平后，shRNA | 第89-90页 |
| 2.6 下调LTA4H和AKT1的表达水平以后,能够引起凋亡相关通路的改变 | 第90-91页 |
| 2.7 下调LTA4H和AKT1的表达水平后,能够抑制其相应下游BLT1和P-stat3的磷酸化水平 | 第91-92页 |
| 2.8 下调LTA4H和AKT1的表达水平后,能够引起细胞周期相关蛋白的改变 | 第92-94页 |
| 第六章 下调LTA4H和AKT的表达能够抑制结肠癌细胞HCT15的克隆形成和细胞增殖,同时促进结肠癌细胞的凋亡,调控细胞周期 | 第94-111页 |
| 1 材料与方法 | 第94-103页 |
| 1.1 主要仪器设备 | 第94页 |
| 1.2 主要材料和试剂 | 第94-95页 |
| 1.3 常用试剂配制 | 第95页 |
| 1.4 实验方法 | 第95-103页 |
| 1.5 统计学处理 | 第103页 |
| 2 结果 | 第103-111页 |
| 2.1 用 shRNA | 第103-104页 |
| 2.2 成功下调LTA4H 和AKT1的表达水平后，shRNA | 第104页 |
| 2.3 下调 LTA4H 和 AKT1 的表达水平后，sh RNA | 第104-105页 |
| 2.4 下调 LTA4H 和 AKT1 的表达水平后，shRNA | 第105-106页 |
| 2.5 下调 LTA4H 和 AKT1 的表达水平后，shRNA | 第106-107页 |
| 2.6 下调LTA4H和AKT1的表达水平以后,能够引起凋亡相关通路的改变 | 第107-108页 |
| 2.7 下调LTA4H和AKT1 的表达水平后,能够抑制其相应下游BLT1 和P-stat3 的磷酸化水平 | 第108-109页 |
| 2.8 下调LTA4H和AKT1 的表达水平后,能够引起细胞周期相关蛋白的改变 | 第109-111页 |
| 讨论 | 第111-114页 |
| 全文结论 | 第114-115页 |
| 参考文献(References) | 第115-119页 |
| 综述 | 第119-131页 |
| 参考文献(References) | 第126-131页 |
| 个人简历 | 第131-132页 |
| 博士研究生期间发表论文、参加国际学术会议 | 第132-133页 |
| 致谢 | 第133页 |
