| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第1章 论文选题依据及研究内容 | 第14-20页 |
| 1.1 研究现状及研究意义 | 第14-17页 |
| 1.2 研究目的及研究内容 | 第17-20页 |
| 1.2.1 研究目的 | 第17-18页 |
| 1.2.2 研究内容及技术路线 | 第18-20页 |
| 第2章 XX03529对慢性粒细胞白血病K562细胞株的抗肿瘤活性研究 | 第20-38页 |
| 2.1 前言 | 第20-21页 |
| 2.2 XX03529的纯度分析研究 | 第21-22页 |
| 2.2.1 材料及试剂 | 第21页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第21页 |
| 2.2.3 XX03529紫外最大吸收波长的确定 | 第21页 |
| 2.2.4 HPLC色谱流动相条件 | 第21-22页 |
| 2.2.5 试验样品XX03529的纯度测定 | 第22页 |
| 2.3 XX03529对肿瘤细胞抑制作用的选择性研究 | 第22-25页 |
| 2.3.1 材料及试剂 | 第22-23页 |
| 2.3.2 实验仪器 | 第23页 |
| 2.3.3 试验试剂的配制及试验用品准备 | 第23-24页 |
| 2.3.4 细胞培养方法 | 第24页 |
| 2.3.5 肿瘤细胞生长曲线的测定 | 第24-25页 |
| 2.3.6 MTT比色试验检测药物对肿瘤细胞的选择性 | 第25页 |
| 2.4 四甲基偶氮唑蓝(MTT)比色法检测XX05329对K562细胞的增殖抑制率并绘制时效曲线及量效曲线 | 第25-27页 |
| 2.4.1 材料及试剂 | 第25-26页 |
| 2.4.2 实验仪器 | 第26-27页 |
| 2.4.3 试验方法 | 第27页 |
| 2.5 软琼脂克隆形成试验检测K562细胞对XX03529的敏感性 | 第27-29页 |
| 2.5.1 材料及试剂 | 第27-28页 |
| 2.5.2 实验仪器 | 第28页 |
| 2.5.3 试验试剂的配制及试验用品准备 | 第28-29页 |
| 2.5.4 软琼脂克隆形成试验方法 | 第29页 |
| 2.6 试验结果 | 第29-36页 |
| 2.6.1 XX03529的纯度分析研究结果 | 第29-31页 |
| 2.6.2 四种肿瘤细胞生长曲线的测定结果 | 第31-32页 |
| 2.6.3 药物对四种肿瘤细胞的增殖抑制率及其IC50值 | 第32-33页 |
| 2.6.4 XX03529对K562细胞的时效曲线及量效曲线 | 第33-34页 |
| 2.6.5 K562细胞对XX03529的敏感性试验结果 | 第34-36页 |
| 2.7 讨论 | 第36-37页 |
| 2.8 小结 | 第37-38页 |
| 第3章 XX03529对慢性粒细胞白血病K562细胞株的作用机制研究 | 第38-66页 |
| 3.1 前言 | 第38-39页 |
| 3.2 XX03529对K562细胞分化及细胞周期动力学的影响 | 第39-41页 |
| 3.2.1 材料及试剂 | 第39页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第39-40页 |
| 3.2.3 Wright-Giemsa复合染色检测药物诱导细胞分化研究 | 第40页 |
| 3.2.4 流式细胞术检测药物对细胞周期动力学研究 | 第40-41页 |
| 3.3 XX03529对K562细胞凋亡的诱导效应研究 | 第41-43页 |
| 3.3.1 材料及试剂 | 第41页 |
| 3.3.2 实验仪器 | 第41-42页 |
| 3.3.3 AO-EB双染色检测细胞凋亡形态变化 | 第42页 |
| 3.3.4 DNAladder试验 | 第42-43页 |
| 3.3.5 流式细胞术检测药物诱导细胞凋亡作用 | 第43页 |
| 3.4 XX03529对K562细胞的基因表达影响 | 第43-48页 |
| 3.4.1 材料及试剂 | 第43-44页 |
| 3.4.2 实验仪器 | 第44-45页 |
| 3.4.3 提取细胞总RNA | 第45-46页 |
| 3.4.4 RNA逆转录 | 第46页 |
| 3.4.5 RT-PCR技术扩增目的基因检测药物对细胞基因的表达量影响 | 第46-48页 |
| 3.5 XX03529对K562细胞中蛋白表达的影响 | 第48-52页 |
| 3.5.1 材料及试剂 | 第48-49页 |
| 3.5.2 实验仪器 | 第49-50页 |
| 3.5.3 试剂配制 | 第50页 |
| 3.5.4 蛋白样品的制备 | 第50-51页 |
| 3.5.5 BCA法检测蛋白浓度 | 第51页 |
| 3.5.6 Western-blot试验方法 | 第51-52页 |
| 3.6 试验结果 | 第52-61页 |
| 3.6.1 Wright-Giemsa复合染色检测药物诱导细胞分化研究 | 第52-54页 |
| 3.6.2 流式细胞术检测药物对细胞周期动力学研究 | 第54-55页 |
| 3.6.3 AO-EB双染色检测细胞凋亡形态变化 | 第55-56页 |
| 3.6.4 DNAladder试验 | 第56页 |
| 3.6.5 流式细胞术检测药物诱导细胞凋亡作用 | 第56-58页 |
| 3.6.6 RT-PCR技术扩增目的基因检测药物对细胞基因的表达量影响 | 第58-60页 |
| 3.6.7 XX03529对K562细胞中蛋白表达的影响 | 第60-61页 |
| 3.7 讨论 | 第61-64页 |
| 3.8 小结 | 第64-66页 |
| 第4章 基于计算机辅助药物设计软件的XX03529三维小分子模型的作用机制研究 | 第66-72页 |
| 4.1 前言 | 第66-67页 |
| 4.2 研究方法 | 第67页 |
| 4.2.1 构建小分子配体数据库 | 第67页 |
| 4.2.2 分子对接 | 第67页 |
| 4.3 研究结果与讨论 | 第67-71页 |
| 4.4 小结 | 第71-72页 |
| 第5章 全文总结 | 第72-75页 |
| 5.1 全文总结 | 第72-75页 |
| 5.1.1 主要结论 | 第72-74页 |
| 5.1.2 主要创新点 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-82页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文及参加科研情况 | 第82-83页 |
