摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
第一章 绪论 | 第10-20页 |
1.1 花鳗鲡的研究进展 | 第10-12页 |
1.1.1 分类 | 第10页 |
1.1.2 鳗鲡生活史与种质资源 | 第10-12页 |
1.1.3 花鳗鲡的研究现状 | 第12页 |
1.2 鱼鳃细胞的主要类型和研究进展 | 第12-14页 |
1.2.1 鱼上皮鳃细胞的分类 | 第12-13页 |
1.2.2 鱼上皮鳃细胞的研究进展 | 第13-14页 |
1.3 钙稳态 | 第14-17页 |
1.3.1 哺乳动物的钙稳态 | 第14-15页 |
1.3.2 鱼类的钙稳态 | 第15页 |
1.3.3 钙离子转运体 | 第15-17页 |
1.4 本论文研究目的、意义和主要内容 | 第17-20页 |
1.4.1 本研究的目的和意义 | 第17-18页 |
1.4.2 本研究的主要内容 | 第18-19页 |
1.4.3 研究技术路线 | 第19-20页 |
第二章 极性钙胁迫下花鳗鲡CACNB基因体内外表达分析 | 第20-44页 |
2.1 实验材料、仪器与试剂 | 第20-22页 |
2.1.1 实验材料 | 第20页 |
2.1.2 实验仪器设备 | 第20-22页 |
2.1.3 实验试剂 | 第22页 |
2.2 实验方法 | 第22-26页 |
2.2.1 人工钙离子水的配制 | 第22-23页 |
2.2.2 原代鳃细胞的胁迫处理及样本采集 | 第23页 |
2.2.3 花鳗鲡组织与鳃细胞总RNA提取和反转录 | 第23页 |
2.2.4 荧光定量PCR检测CACNB基因的表达量 | 第23-24页 |
2.2.5 蛋白质免疫印迹 | 第24-25页 |
2.2.6 免疫组化 | 第25页 |
2.2.7 数据处理与分析 | 第25-26页 |
2.3 结果与分析 | 第26-41页 |
2.3.1 CACNB基因组织分布差异表达 | 第26-29页 |
2.3.2 极性钙胁迫下花鳗鲡CACNB的mRNA时序表达 | 第29-31页 |
2.3.3 极性钙胁迫下花鳗鲡CACNB的蛋白时序表达 | 第31-33页 |
2.3.4 极性钙胁迫下花鳗鲡CACNB的蛋白定位 | 第33-36页 |
2.3.5 极性钙胁迫下不同时间的细胞密度 | 第36-38页 |
2.3.6 极性钙胁迫对原代鳃细胞CACNB基因的影响 | 第38-41页 |
2.4 讨论 | 第41-44页 |
第三章 极性钙胁迫下花鳗鲡NCX和PMCA基因不同时空的差异表达 | 第44-53页 |
3.1 实验材料、仪器与试剂 | 第44页 |
3.1.1 实验材料 | 第44页 |
3.1.2 实验仪器设备 | 第44页 |
3.1.3 实验试剂 | 第44页 |
3.2 实验方法 | 第44-45页 |
3.2.1 人工钙离子水的配制 | 第44页 |
3.2.2 总RNA提取和反转录 | 第44页 |
3.2.3 荧光定量PCR检测NCXs和PMCAs基因的表达量 | 第44-45页 |
3.2.4 数据处理与分析 | 第45页 |
3.3 结果与分析 | 第45-51页 |
3.3.1 NCXs和PMCAs基因组织分布差异表达 | 第45-48页 |
3.3.2 极性钙胁迫下花鳗鲡NCXs和PMCAs的mRNA时序表达 | 第48-51页 |
3.4 讨论 | 第51-53页 |
第四章 极性钙胁迫对花鳗鲡血清和血液指标的影响 | 第53-61页 |
4.1 实验材料、仪器与试剂 | 第53-54页 |
4.1.1 实验材料 | 第53页 |
4.1.2 实验仪器设备 | 第53页 |
4.1.3 实验试剂 | 第53-54页 |
4.2 实验方法 | 第54页 |
4.2.1 人工钙离子水的配制 | 第54页 |
4.2.2 不同浓度钙胁迫处理及样本采集 | 第54页 |
4.2.3 数据处理与分析 | 第54页 |
4.3 结果与分析 | 第54-59页 |
4.3.1 极性钙胁迫下花鳗鲡血清钙浓度和血清渗透压的变化规律 | 第54-56页 |
4.3.2 极性钙胁迫对花鳗鲡血液指标的影响 | 第56-59页 |
4.4 讨论 | 第59-61页 |
第五章 小结 | 第61-63页 |
5.1 结论 | 第61-62页 |
5.2 展望 | 第62-63页 |
参考文献 | 第63-72页 |
在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第72-73页 |
致谢 | 第73页 |