| 符号说明 | 第4-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第11-27页 |
| 1.1 糖皮质激素概述 | 第11-17页 |
| 1.1.1 糖皮质激素的合成 | 第11-12页 |
| 1.1.2 糖皮质激素的生理作用 | 第12-15页 |
| 1.1.3 糖皮质激素分泌的调节 | 第15-17页 |
| 1.2 糖皮质激素受体概述 | 第17-20页 |
| 1.2.1 糖皮质激素受体的结构与分类 | 第17-18页 |
| 1.2.2 糖皮质激素受体的分布 | 第18页 |
| 1.2.3 糖皮质激素受体的作用机理 | 第18-19页 |
| 1.2.4 糖皮质激素受体的生理作用 | 第19-20页 |
| 1.3 糖皮质激素合成酶概述 | 第20-24页 |
| 1.3.1 11β-HSD1 与 11β-HSD2 的研究简史 | 第20-21页 |
| 1.3.2 11β-HSD1 与 11β-HSD2 的基因结构特点 | 第21页 |
| 1.3.3 11β-HSD1 与 11β-HSD2 的分布及功能 | 第21-24页 |
| 1.3.4 11β-HSD 的调节 | 第24页 |
| 1.4 脂肪细胞 | 第24-27页 |
| 1.4.1 脂肪细胞的分类与功能 | 第24-25页 |
| 1.4.2 脂肪细胞的形成 | 第25-27页 |
| 2 材料与方法 | 第27-44页 |
| 2.1 材料 | 第27-30页 |
| 2.1.1 试验动物 | 第27页 |
| 2.1.2 试验药品与试剂 | 第27页 |
| 2.1.3 试验仪器设备 | 第27页 |
| 2.1.4 主要试剂配制 | 第27-30页 |
| 2.2 试验方法 | 第30-44页 |
| 2.2.1 试验动物的饲养 | 第30页 |
| 2.2.2 试验动物子宫颈样本的采集 | 第30-31页 |
| 2.2.3 Western Βlot 法检测兔抗人 NR3C1 抗体，兔抗人 11β-HSD1 抗体及兔抗人 11β-HSD2抗体在山羊子宫颈组织中的特异性 | 第31-34页 |
| 2.2.4 免疫组织化学方法检测 NR3C1、11β-HSD1、11β-HSD2 和脂肪细胞在围产期山羊子宫颈组织中的分布 | 第34-40页 |
| 2.2.5 荧光定量 RT-PCR 方法检测围产期山羊子宫颈组织中的 NR3C1、11β-HSD1 及11β-HSD2 的相对表达水平 | 第40-44页 |
| 3 结果与分析 | 第44-55页 |
| 3.1 Western Blot 法检测围产期山羊子宫颈兔抗人 NR3C1 抗体、11β-HSD1 抗体、11β-HSD2 抗体的特异性 | 第44页 |
| 3.2 围产期山羊子宫颈中脂滴的分布 | 第44-46页 |
| 3.3 围产期山羊子宫颈中 NR3C1 受体蛋白及合成酶 11β-HSD1、11β-HSD2 的分布 | 第46-50页 |
| 3.4 围产期山羊子宫颈组织的荧光定量 RT-PCR 检测结果 | 第50-55页 |
| 3.4.1 所有组织样本总 RNA 提取的完整性和纯度以及荧光定量 RT-PCR 的重复性检验 | 第50页 |
| 3.4.2 用 RT-PCR 方法得到的扩增产物的特异性检验 | 第50页 |
| 3.4.3 实时荧光定量 RT-PCR 扩增 NR3C1、11β-HSD1、11β-HSD2 及 ACTΒ内参基因片段产物的扩增曲线 | 第50-51页 |
| 3.4.4 围产期山羊各期子宫颈组织 RT-PCR 方法检测目的基因的表达效果 | 第51-55页 |
| 4 讨论 | 第55-58页 |
| 5 结论 | 第58-59页 |
| 6 参考文献 | 第59-68页 |
| 7 致谢 | 第68-69页 |
| 8 作者简介及发表论文情况 | 第69页 |
