| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 绪论 | 第8-14页 |
| 1.1 L-天冬酰胺酶概述 | 第8-10页 |
| 1.1.1 L-天冬酰胺酶的结构特点和催化机制 | 第8-9页 |
| 1.1.2 L-天冬酰胺酶的应用 | 第9-10页 |
| 1.2 L-天冬酰胺酶的发酵生产 | 第10-11页 |
| 1.3 L-天冬酰胺酶的提取与稳定化 | 第11-12页 |
| 1.4 立题依据及研究意义 | 第12-13页 |
| 1.5 本论文主要研究内容 | 第13-14页 |
| 第二章 材料与方法 | 第14-22页 |
| 2.1 材料 | 第14-15页 |
| 2.1.1 菌株 | 第14页 |
| 2.1.2 培养基 | 第14页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第14-15页 |
| 2.1.4 实验试剂 | 第15页 |
| 2.2 实验方法 | 第15-22页 |
| 2.2.1 培养方法 | 第15-16页 |
| 2.2.2 摇瓶水平优化 | 第16-18页 |
| 2.2.3 分析方法 | 第18-19页 |
| 2.2.4 酶制剂制备工艺 | 第19-20页 |
| 2.2.5 絮凝过滤 | 第20页 |
| 2.2.6 乙醇沉淀 | 第20页 |
| 2.2.7 真空冷冻干燥 | 第20页 |
| 2.2.8 保护剂对液体L-天冬酰胺酶稳定性的影响 | 第20-22页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第22-48页 |
| 3.1 摇瓶水平重组B.subtilis产L-天冬酰胺酶培养条件和发酵培养基优化 | 第22-31页 |
| 3.1.1 重组B.subtilis培养条件优化 | 第22-23页 |
| 3.1.2 单因素实验优化发酵培养基 | 第23-26页 |
| 3.1.3 Plackett-Burman实验 | 第26-27页 |
| 3.1.4 最陡爬坡实验 | 第27-28页 |
| 3.1.5 中心组合实验 | 第28-29页 |
| 3.1.6 神经网络模型构建及结果分析 | 第29-31页 |
| 3.2 3L发酵罐水平重组B.subtilis产L-天冬酰胺酶发酵条件优化 | 第31-39页 |
| 3.2.1 搅拌转速对L-天冬酰胺酶分批发酵的影响 | 第31-34页 |
| 3.2.2 pH对L-天冬酰胺酶分批发酵的影响 | 第34页 |
| 3.2.3 补料时间对L-天冬酰胺酶补料分批发酵的影响 | 第34-36页 |
| 3.2.4 补料培养基组成对L-天冬酰胺酶补料分批发酵的影响 | 第36页 |
| 3.2.5 补料量对L-天冬酰胺酶补料分批发酵的影响 | 第36-38页 |
| 3.2.6 流加方式对L-天冬酰胺酶补料分批发酵的影响 | 第38-39页 |
| 3.3 L-天冬酰胺酶的提取及稳定化研究 | 第39-48页 |
| 3.3.1 絮凝过滤 | 第39-41页 |
| 3.3.2 乙醇沉淀 | 第41-42页 |
| 3.3.3 真空冷冻干燥 | 第42-43页 |
| 3.3.4 液体L-天冬酰胺酶稳定性研究 | 第43-48页 |
| 结论与展望 | 第48-50页 |
| 主要结论 | 第48页 |
| 展望 | 第48-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-57页 |
| 附录: 作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第57页 |
