符号说明 | 第4-12页 |
中文摘要 | 第12-14页 |
Abstract | 第14-15页 |
1 引言 | 第16-28页 |
1.1 研究意义 | 第16-17页 |
1.2 植物铁营养 | 第17-22页 |
1.2.1 铁在土壤中的存在形态及其有效性 | 第17页 |
1.2.2 植物体内铁的生理功能 | 第17-18页 |
1.2.3 植物缺铁的危害 | 第18页 |
1.2.4 植物对铁的吸收 | 第18-20页 |
1.2.4.1 植物吸收铁的生理生化机制 | 第18-19页 |
1.2.4.2 植物吸收铁的分子机制 | 第19-20页 |
1.2.5 植物体内铁的运输 | 第20-21页 |
1.2.5.1 铁在植物体内运输的生理生化机制 | 第20页 |
1.2.5.2 铁在植物体内分配的分子生理机制 | 第20-21页 |
1.2.6 解决花生缺铁失绿的途径及存在的问题 | 第21-22页 |
1.3 水杨酸(SA)在植物逆境方面的研究进展 | 第22-24页 |
1.3.1 SA 的理化性质 | 第22页 |
1.3.2 SA 在植物逆境中的作用 | 第22-24页 |
1.3.2.1 SA 与光合作用 | 第22-23页 |
1.3.2.2 SA 与抗氧化酶系统 | 第23页 |
1.3.2.3 SA 与信号传导 | 第23-24页 |
1.3.3 SA 与铁及 NO 关系的研究进展 | 第24页 |
1.4 一氧化氮(NO)在植物逆境方面的研究进展 | 第24-27页 |
1.4.1 NO 的理化性质 | 第24页 |
1.4.2 NO 的生理功能 | 第24-26页 |
1.4.2.1 NO 与植物种子的萌发 | 第24-25页 |
1.4.2.2 NO 与植物激素 | 第25页 |
1.4.2.3 NO 与信号传导 | 第25页 |
1.4.2.4 NO 与逆境胁迫 | 第25-26页 |
1.4.3 NO 与植物铁代谢的研究进展 | 第26-27页 |
1.5 问题的提出 | 第27-28页 |
2 材料与方法 | 第28-36页 |
2.1 外源 SA 对花生幼苗生理特性的影响 | 第28-30页 |
2.1.1 试验设计 | 第28页 |
2.1.2 测定项目与方法 | 第28-30页 |
2.1.2.1 植株生长指标及根系活力的测定 | 第28页 |
2.1.2.2 光合色素含量的测定 | 第28页 |
2.1.2.3 植株叶片活性铁含量的测定 | 第28-29页 |
2.1.2.4 Fe~(3+)还原酶活性的测定 | 第29页 |
2.1.2.5 营养液 pH 的测定 | 第29页 |
2.1.2.6 亚细胞结构中铁含量的测定 | 第29页 |
2.1.2.7 抗氧化酶活性及 MDA 含量的测定 | 第29页 |
2.1.2.8 超氧阴离子(O_(2)~(+-) )产生速率的测定 | 第29-30页 |
2.1.2.9 矿质元素的测定 | 第30页 |
2.2 不同添加方式的 SA 对花生缺铁胁迫的缓解作用 | 第30-32页 |
2.2.1 试验设计 | 第30页 |
2.2.2 测定项目及方法 | 第30-32页 |
2.2.2.1 植株生长指标、根系活力、花生产量及脂肪含量的测定 | 第30页 |
2.2.2.2 光合色素含量的测定 | 第30-31页 |
2.2.2.3 光合参数和荧光参数的测定 | 第31页 |
2.2.2.4 植株叶片活性铁含量的测定 | 第31页 |
2.2.2.5 Fe~(3+)还原酶活性的测定 | 第31页 |
2.2.2.6 土壤 pH 的测定 | 第31页 |
2.2.2.7 根系质膜提取及质膜 H~(+)-ATP 酶活性的测定 | 第31页 |
2.2.2.8 土壤中有效铁含量的测定 | 第31页 |
2.2.2.9 抗氧化酶活性及 MDA 含量的测定 | 第31页 |
2.2.2.10 超氧阴离子(O_(2)~(+-) )产生速率的测定 | 第31-32页 |
2.2.2.11 植株中矿质元素和花生籽粒中 Fe 含量的测定 | 第32页 |
2.3 外源 NO 对花生幼苗缺铁胁迫的缓解作用 | 第32-33页 |
2.3.1 试验设计 | 第32页 |
2.3.2 测定项目与方法 | 第32-33页 |
2.3.2.1 植株生长指标及根系活力的测定 | 第32页 |
2.3.2.2 光合色素含量的测定 | 第32页 |
2.3.2.3 植株叶片活性铁含量的测定 | 第32页 |
2.3.2.4 Fe~(3+)还原酶活性的测定 | 第32页 |
2.3.2.5 营养液 pH 的测定 | 第32页 |
2.3.2.6 根系质膜提取及质膜 H~(+)-ATP 酶活性的测定 | 第32页 |
2.3.2.7 亚细胞结构中铁含量的测定 | 第32页 |
2.3.2.8 抗氧化酶活性及 MDA 含量的测定 | 第32页 |
2.3.2.9 超氧阴离子(O_(2)~(+-))产生速率的测定 | 第32-33页 |
2.3.2.10 过氧化氢(H_(2)O_(2))含量的测定 | 第33页 |
2.3.2.11 矿质元素的测定 | 第33页 |
2.4 不同添加方式的 SNP 对花生缺铁胁迫的缓解作用 | 第33-34页 |
2.4.1 试验设计 | 第33页 |
2.4.2 测定项目及方法 | 第33-34页 |
2.4.2.1 植株生长指标、根系活力及花生产量的测定 | 第33页 |
2.4.2.2 光合色素含量的测定 | 第33页 |
2.4.2.3 植株叶片活性铁含量的测定 | 第33页 |
2.4.2.4 Fe~(3+)还原酶活性的测定 | 第33-34页 |
2.4.2.5 土壤 pH 的测定 | 第34页 |
2.4.2.6 根系质膜提取及质膜 H~(+)-ATP 酶和 Ca~(2+)-ATP 酶活性的测定 | 第34页 |
2.4.2.7 土壤中有效铁含量的测定 | 第34页 |
2.4.2.8 抗氧化酶活性及 MDA 含量的测定 | 第34页 |
2.4.2.9 超氧阴离子(O_(2)~(+-) )产生速率的测定 | 第34页 |
2.4.2.10 植株中矿质元素和花生籽粒中 Fe 含量的测定 | 第34页 |
2.5 外源 SA 与 NO 复合处理对花生幼苗生理特性的影响 | 第34-35页 |
2.5.1 试验设计 | 第34-35页 |
2.5.2 测定项目与方法 | 第35页 |
2.5.2.1 植株生长指标及根系体积的测定 | 第35页 |
2.5.2.2 光合色素含量的测定 | 第35页 |
2.5.2.3 植株叶片活性铁含量的测定 | 第35页 |
2.5.2.4 Fe~(3+)还原酶活性的测定 | 第35页 |
2.5.2.5 营养液 pH 的测定 | 第35页 |
2.5.2.6 质膜 H~(+)-ATP 酶和 Ca~(2+)-ATP 酶活性的测定 | 第35页 |
2.5.2.7 亚细胞结构中铁含量的测定 | 第35页 |
2.5.2.8 抗氧化酶活性及 MDA 含量的测定 | 第35页 |
2.5.2.9 超氧阴离子(O_(2)~(+-))产生速率的测定 | 第35页 |
2.5.2.10 过氧化氢(H_(2)O_(2))含量的测定 | 第35页 |
2.5.2.11 矿质元素的测定 | 第35页 |
2.6 数据处理 | 第35-36页 |
3 结果与分析 | 第36-70页 |
3.1 外源 SA 对缺铁胁迫下花生幼苗生理特性的影响 | 第36-45页 |
3.1.1 不同浓度外源 SA 对花生幼苗生长及根系活力的影响 | 第36-37页 |
3.1.2 不同浓度外源 SA 对花生叶片光合色素的影响 | 第37-38页 |
3.1.3 不同浓度外源 SA 对花生叶片活性铁和根系 Fe3+还原酶活性的影响 | 第38-39页 |
3.1.4 不同浓度外源 SA 对花生全 Fe 含量的影响 | 第39-40页 |
3.1.5 不同浓度外源 SA 对亚细胞中 Fe 含量的影响 | 第40页 |
3.1.6 不同浓度外源 SA 对营养液 pH 值的影响 | 第40-41页 |
3.1.7 不同浓度外源 SA 对花生抗氧化酶活性的影响 | 第41-42页 |
3.1.8 不同浓度外源 SA 对花生 MDA、O_(2)~(+-) 产生速率和 H_(2)O_(2)含量的影响 | 第42-44页 |
3.1.9 不同浓度外源 SA 对花生矿质元素的影响 | 第44-45页 |
3.2 不同添加方式的外源 SA 对花生缺铁胁迫的缓解作用 | 第45-51页 |
3.2.1 不同添加方式的外源 SA 对花生生长及根系活力的影响 | 第45页 |
3.2.2 不同添加方式的外源 SA 对花生产量、籽粒中铁含量及脂肪含量的影响 | 第45-46页 |
3.2.3 不同添加方式的外源 SA 对花生叶片光合色素含量的影响 | 第46-47页 |
3.2.4 不同添加方式的外源 SA 对花生光合和荧光的影响 | 第47-48页 |
3.2.5 不同添加方式的外源 SA 对花生根系 H~(+)-ATP 酶活性、土壤 pH、土壤活性铁含量、根系 Fe~(3+)还原酶活性以及全铁含量的影响 | 第48-49页 |
3.2.6 不同添加方式的外源 SA 对花生叶片活性铁含量的影响 | 第49页 |
3.2.7 不同添加方式的外源 SA 对花生叶片抗氧化酶活性的影响 | 第49-50页 |
3.2.8 不同添加方式的外源 SA 对花生 MDA 含量和 O_(2)~(+-) 产生速率的影响 | 第50-51页 |
3.2.9 不同添加方式的外源 SA 对花生矿质元素含量的影响 | 第51页 |
3.3 外源 NO 对花生幼苗缺铁胁迫的缓解效应 | 第51-58页 |
3.3.1 不同浓度 SNP 对花生幼苗生长及根系活力的影响 | 第51-52页 |
3.3.2 不同浓度 SNP 对花生叶片光合色素的影响 | 第52-53页 |
3.3.3 不同浓度 SNP 对花生 H~(+)-ATP 酶活性的影响 | 第53-54页 |
3.3.4 不同浓度 SNP 对花生全 Fe 含量、活性铁以及 Fe~(3+)还原酶活性的影响 | 第54-55页 |
3.3.5 不同浓度 SNP 对花生亚细胞结构中 Fe 含量的影响 | 第55-56页 |
3.3.6 不同浓度 SNP 对花生抗氧化酶活性的影响 | 第56-57页 |
3.3.7 不同浓度 SNP 对花生 MDA、O_(2)~(+-)产生速率及 H_(2)O_(2)含量的影响 | 第57-58页 |
3.3.8 不同浓度 SNP 对花生矿质元素含量的影响 | 第58页 |
3.4 不同添加方式 SNP 对花生缺铁黄化的缓解作用 | 第58-64页 |
3.4.1 不同添加方式 SNP 对花生生长及产量和籽粒中 Fe 含量的影响 | 第58-59页 |
3.4.2 不同添加方式 SNP 对花生叶片光合色素含量的影响 | 第59-60页 |
3.4.3 不同添加方式 SNP 对花生叶片活性铁含量的影响 | 第60-61页 |
3.4.4 不同添加方式 SNP 对花生根系活力、H~(+)-ATP 酶和 Ca~(2+)-ATP 酶活性以及植株中 Fe和 Ca 含量的影响 | 第61-62页 |
3.4.5 不同添加方式 SNP 对土壤 pH、土壤活性铁以及根系 Fe~(3+)还原酶活性的影响 | 第62页 |
3.4.6 不同添加方式 SNP 对花生叶片 MDA 含量和 O_(2)~(+-) 产生速率的影响 | 第62-63页 |
3.4.7 不同添加方式 SNP 对花生抗氧化酶活性的影响 | 第63-64页 |
3.5 外源 SA 与 SNP 复合对花生幼苗缺铁胁迫的缓解作用 | 第64-70页 |
3.5.1 外源 SA 与 SNP 复合对花生生长的影响 | 第64页 |
3.5.2 外源 SA 与 SNP 复合对花生叶片光合色素的影响 | 第64-65页 |
3.5.3 外源 SA 与 SNP 复合对花生 H~(+)-ATP 酶和 Ca~(2+)-ATP 酶以及营养液 pH 的影响 | 第65-66页 |
3.5.4 外源 SA 与 SNP 复合对花生全 Fe 含量、叶片活性铁含量以及 Fe~(3+)还原酶活性的影响 | 第66-67页 |
3.5.5 外源 SA 与 SNP 复合对花生亚细胞结构中 Fe 含量的影响 | 第67-68页 |
3.5.6 外源 SA 与 SNP 复合对花生抗氧化酶活性的影响 | 第68页 |
3.5.7 外源 SA 与 SNP 复合对花生 O_(2)~(+-) 产生速率、H_(2)O_(2)含量以及 MDA 含量的影响 | 第68-69页 |
3.5.8 外源 SA 与 SNP 复合对花生 K、Ca、Mg 含量的影响 | 第69-70页 |
3.5.9 外源 SA 与 SNP 复合对花生 Mn、Cu、Zn 含量的影响 | 第70页 |
4 讨论 | 第70-80页 |
4.1 外源 SA 对缺铁胁迫下花生幼苗生理特性的缓解作用 | 第70-73页 |
4.2 不同添加方式的外源 SA 对花生缺铁胁迫的缓解作用 | 第73-75页 |
4.3 外源 NO 对缺铁胁迫下花生幼苗生理特性的缓解作用 | 第75-77页 |
4.4 不同添加方式的外源 SNP 对花生缺铁胁迫的缓解作用 | 第77-78页 |
4.5 外源 SA 与 SNP 复合对花生缺铁胁迫的缓解作用 | 第78-80页 |
5 结论 | 第80-81页 |
6 参考文献 | 第81-90页 |
致谢 | 第90-91页 |
攻读硕士期间发表论文情况 | 第91页 |