| 致谢 | 第10-11页 |
| 缩略表 | 第11-12页 |
| 摘要 | 第12-14页 |
| Abstract | 第14-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-30页 |
| 引言 | 第16页 |
| 1 植物内源节律中心调控体系 | 第16-22页 |
| 1.1 中心调控相关基因 | 第17-20页 |
| 1.1.1 CCA1和LHY | 第17页 |
| 1.1.2 TOC1 | 第17-18页 |
| 1.1.3 ELF3(EARLY FLOWERING 3) | 第18-19页 |
| 1.1.4 TIC(TIME FOR COFFEE) | 第19页 |
| 1.1.5 ELF4(EARLY-FLOWERING4) | 第19页 |
| 1.1.6 GI(GIGANTEA) | 第19-20页 |
| 1.1.7 CHE(CCA Hiking expedition) | 第20页 |
| 1.2 转录后调控 | 第20页 |
| 1.3 调控的核心机制 | 第20-22页 |
| 2 内源节律与糖代谢之间的关系 | 第22-28页 |
| 2.1 内源节律与蔗糖代谢 | 第22页 |
| 2.2 内源节律与瞬时淀粉的合成与分解 | 第22-26页 |
| 2.2.1 叶中瞬时淀粉的合成机制 | 第23-24页 |
| 2.2.2 叶中瞬时淀粉的降解机制 | 第24-26页 |
| 2.3 内源节律与磷信号平衡的关系 | 第26-28页 |
| 3 植物体内磷平衡与糖的关系 | 第28-29页 |
| 4 本研究的目的与意义 | 第29-30页 |
| 第二章 OSLIR1的生物信息学分析 | 第30-34页 |
| 1 方法 | 第30-31页 |
| 1.1 OsLIR1基因结构分析 | 第30页 |
| 1.2 OsLIR1基因拷贝数确定和蛋白结构域分析 | 第30页 |
| 1.3 OsLIR1基因的系统进化分析 | 第30-31页 |
| 2 结果与分析 | 第31-32页 |
| 2.1 OsLIR1基因结构分析 | 第31页 |
| 2.2 OsLIR1基因拷贝数确定和蛋白结构域分析 | 第31-32页 |
| 2.3 OsLIR1基因的进化分析 | 第32页 |
| 3 小结与讨论 | 第32-34页 |
| 第三章 OSLIR1基因的表达与定位分析 | 第34-47页 |
| 1 OSLIR1基因的表达分析 | 第34-37页 |
| 1.1 材料 | 第34页 |
| 1.2 方法 | 第34-36页 |
| 1.2.1 样品的准备 | 第34页 |
| 1.2.2 植物总RNA的提取 | 第34-35页 |
| 1.2.3 逆转录及定量RT-PCR | 第35-36页 |
| 1.3 结果与讨论 | 第36-37页 |
| 2 OSLIR1的亚细胞定位 | 第37-42页 |
| 2.1 材料 | 第37-38页 |
| 2.2 方法 | 第38-41页 |
| 2.2.1 35S：：OsLIR1：：sGFP融合表达载体的构建 | 第38-39页 |
| 2.2.2 基因枪法转化洋葱表皮细跑 | 第39-41页 |
| 2.2.3 转化烟草 | 第41页 |
| 2.3 结果与分析 | 第41-42页 |
| 3 OSLIR1基因的组织特异性表达分析 | 第42-45页 |
| 3.1 材料 | 第42-43页 |
| 3.2 方法 | 第43-44页 |
| 3.2.1 OsLIR1基因启动子融合GUS载体的构建 | 第43-44页 |
| 3.2.2 GLS染色及显微观察 | 第44页 |
| 3.3 结果与分析 | 第44-45页 |
| 4 小结与讨论 | 第45-47页 |
| 第四章 OSLIR1转基因及其表型分析 | 第47-69页 |
| 1 OSLIR1超表达及RNAI干涉转基因水稻的构建 | 第47-56页 |
| 1.1 材料 | 第47页 |
| 1.2 方法 | 第47-55页 |
| 1.2.1 OsLIR1基因增强载体的构建 | 第47-48页 |
| 1.2.2 OsLIR1基因RNAi干涉载体的构建 | 第48-49页 |
| 1.2.3 农杆菌介导的水稻转化 | 第49-51页 |
| 1.2.4 T0代转基因水稻的半定量RT-PCR检测 | 第51-52页 |
| 1.2.5 转基因水稻的Southern Blot检测 | 第52-55页 |
| 1.3 结果与分析 | 第55-56页 |
| 1.3.1 OsLIR1转基因株系增强表达和RNAi的鉴定 | 第55-56页 |
| 1.3.2 OsLIR1转基因株系Southern鉴定 | 第56页 |
| 2 OSLIR1转基因增强及干涉株系的表型分析 | 第56-68页 |
| 2.1 材料 | 第56页 |
| 2.2 方法 | 第56-61页 |
| 2.2.1 OsLIR1增强及干涉株系的表型观察及参数统计 | 第56-57页 |
| 2.2.2 植物有效磷含量的测定 | 第57-58页 |
| 2.2.3 植物总磷的测定 | 第58-59页 |
| 2.2.4 金属离子含量的测定 | 第59页 |
| 2.2.5 OsLIR1增强及干涉株系的土培实验及生育期表型观察 | 第59-61页 |
| 2.3 结果与分析 | 第61-68页 |
| 2.3.1 OsLIR1增强及干涉株系的表型观察 | 第61-62页 |
| 2.3.2 OsLIR1增强及干涉株系有效磷的测定结果 | 第62-64页 |
| 2.3.3 OsLIR1增强及干涉株系全磷全氮的测定结果 | 第64-65页 |
| 2.3.4 OsLIR1增强及干涉株系的士培实验及生育期表型观察 | 第65-67页 |
| 2.3.5 金属离子含量的测定 | 第67-68页 |
| 2.3.6 土培实验中土壤磷含量测定 | 第68页 |
| 3 小结与讨论 | 第68-69页 |
| 第五章 磷信号基因在OSLIR1增强及RNAI干涉株系中的表达 | 第69-74页 |
| 1 材料 | 第69页 |
| 2 方法 | 第69-70页 |
| 2.1 样品的准备 | 第69页 |
| 2.2 植物总RNA的提取 | 第69页 |
| 2.3 逆转录及实时定量PCR分析 | 第69-70页 |
| 3 结果与分析 | 第70-73页 |
| 4 小结与讨论 | 第73-74页 |
| 第六章 OSLIR1增强及RNAI干涉株系中淀粉与蔗糖浓度及光合效率的测定 | 第74-78页 |
| 1 材料 | 第74页 |
| 2 方法 | 第74-75页 |
| 2.1 植物蔗糖含量的测定 | 第74页 |
| 2.2 植物淀粉含量的测定 | 第74-75页 |
| 2.3 植物光合效率的测定 | 第75页 |
| 3 实验结果 | 第75-76页 |
| 3.1 蔗糖含量 | 第75页 |
| 3.2 淀粉含量的测定结果 | 第75-76页 |
| 3.3 光合效率的测定结果 | 第76页 |
| 4 小结与讨论 | 第76-78页 |
| 第七章 OSLIR1增强及干涉株系对植物内源节律的影响 | 第78-81页 |
| 1 材料 | 第78页 |
| 2 方法 | 第78-79页 |
| 2.1 样品的准备 | 第78页 |
| 2.2 植物总RNA的提取 | 第78页 |
| 2.3 逆转录及实时定量PCR分析 | 第78-79页 |
| 3 结果与讨论 | 第79-81页 |
| 第八章 结论与展望 | 第81-84页 |
| 1 结论 | 第81-82页 |
| 2 讨论 | 第82-84页 |
| 参考文献 | 第84-90页 |
| 附录 | 第90页 |
