致谢 | 第7-8页 |
摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-11页 |
缩写对照表 | 第12-14页 |
第一章 文献综述 | 第14-25页 |
1.1 前沿 | 第14页 |
1.2 脊椎动物神经肽NPY的研究背景 | 第14-16页 |
1.2.1 脊椎动物神经肽NPY的发现和表达 | 第14-15页 |
1.2.2 脊椎动物神经肽受体NPYR的表达和功能 | 第15页 |
1.2.3 脊椎动物神经肽NPY介导的信号通路 | 第15-16页 |
1.3 昆虫神经多肽研究现状 | 第16-17页 |
1.4 昆虫神经肽NPF的研究背景 | 第17-20页 |
1.4.1 昆虫神经肽NPF的发现与命名 | 第17-18页 |
1.4.2 昆虫神经肽NPF受体的发现 | 第18-19页 |
1.4.3 昆虫神经肽NPF的表达与分布 | 第19页 |
1.4.4 昆虫神经肽NPF受体的表达与分布 | 第19-20页 |
1.5 昆虫神经肽NPF的生理功能研究 | 第20-23页 |
1.5.1 NPF信号与进食,觅食行为和压力反应 | 第20-23页 |
1.5.2 昆虫神经肽NPF的生理功能与G蛋白偶联受体信号转导通路 | 第23页 |
1.6 家蚕神经肽背景分析 | 第23-24页 |
1.7 前景展望 | 第24页 |
1.8 本课题研究的目的和意义 | 第24-25页 |
第二章 家蚕神经多肽受体BmNPFR的克隆、表达及其特征性鉴定 | 第25-37页 |
2.1 前沿 | 第25-26页 |
2.2 材料与方法 | 第26-31页 |
2.2.1 材料 | 第26-27页 |
2.2.2 方法 | 第27-31页 |
2.3 实验结果 | 第31-36页 |
2.3.1 BNGR-A4基因克隆与序列分析 | 第31-33页 |
2.3.2 BmNPFR-EGFP在HEK293和SF21细胞定位 | 第33页 |
2.3.3 BmNPF1a和BmNPF2激活BmNPFR抑制胞内cAMP的积累 | 第33-34页 |
2.3.4 BmNPFR介导胞内Ca~(2+)流 | 第34-36页 |
2.4 讨论 | 第36-37页 |
第三章 家蚕神经肽受体BmNPFR的内吞机制 | 第37-50页 |
3.1 前言 | 第37页 |
3.2 材料与方法 | 第37-41页 |
3.2.1 材料 | 第37-39页 |
3.2.2 方法 | 第39-41页 |
3.3 实验结果 | 第41-48页 |
3.3.1 BmNPFR-EGFP受体内吞 | 第41-43页 |
3.3.2 网格蛋白及β-arrestin对BmNPFR内吞的影响 | 第43-45页 |
3.3.3 BmNPFR的内吞后分布 | 第45-46页 |
3.3.4 PTX对BmNPFR内吞的影响 | 第46-47页 |
3.3.5 BmNPFR受体内吞后的再循环 | 第47-48页 |
3.4 讨论 | 第48-50页 |
第四章 家蚕神经肽受体BmNPFR激活MAPK信号传导机制 | 第50-59页 |
4.1 前言 | 第50页 |
4.2 材料与方法 | 第50-54页 |
4.2.1 材料 | 第50-52页 |
4.2.2 方法 | 第52-54页 |
4.3 实验结果 | 第54-57页 |
4.3.1 BmNPF1a/2诱导BmNPFR受体激活MAPK信号通路 | 第54-55页 |
4.3.2 PTX对BmNPF1a激活BmNPFR介导的ERK1/2磷酸化信号通路的影响 | 第55-56页 |
4.3.3 BmNPFR介导的ERK1/2磷酸化依赖于MEK1/2磷酸化 | 第56页 |
4.3.4 PI3K与PKC参与BmNPFR介导的ERK1/2磷酸化信号通路 | 第56-57页 |
4.3.5 Ca2+不影响BmNPFR介导的ERK1/2磷酸化信号通路 | 第57页 |
4.4 讨论 | 第57-59页 |
第五章 家蚕神经肽BmNPF生理功能研究 | 第59-65页 |
5.1 前言 | 第59页 |
5.2 材料与方法 | 第59-62页 |
5.2.1 材料 | 第59-60页 |
5.2.2 方法 | 第60-62页 |
5.3 实验结果 | 第62-64页 |
5.3.1 BmNPFR受体在家蚕各器官组织中的表达 | 第62-63页 |
5.3.2 体外注射BmNPFR特异性siRNA对家蚕生长状态的影响 | 第63-64页 |
5.4 讨论 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-74页 |
作者简介 | 第74-75页 |