前言 | 第4-5页 |
中文摘要 | 第5-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
主要英文缩写单词表 | 第11-16页 |
第1章 文献综述 | 第16-27页 |
1.1 神经退行性疾病与活性氧簇(ROS) | 第16-22页 |
1.1.1 神经退行性疾病 | 第16-17页 |
1.1.2 ROS与阿尔茨海默病(AD) | 第17-18页 |
1.1.3 ROS与帕金森症(PD) | 第18-21页 |
1.1.4 氧化应激 | 第21-22页 |
1.1.4.1 氧化应激反应 | 第21页 |
1.1.4.2 ROS | 第21-22页 |
1.1.4.3 抗氧化 | 第22页 |
1.2 抗氧化应激 | 第22-23页 |
1.3 天然提取物与抗氧化应激 | 第23-27页 |
1.3.1 天然提取物 | 第23-24页 |
1.3.2 丝膜菌 | 第24-25页 |
1.3.3 儿茶素与CD | 第25-27页 |
第2章 材料与方法 | 第27-41页 |
2.1 实验器材 | 第27-29页 |
2.1.1 实验仪器 | 第27-28页 |
2.1.2 主要试剂 | 第28-29页 |
2.2 实验方法 | 第29-40页 |
2.2.1 PC-12 细胞的培养 | 第29-31页 |
2.2.1.1 细胞复苏和培养 | 第29-30页 |
2.2.1.2 细胞传代 | 第30-31页 |
2.2.1.3 细胞冻存 | 第31页 |
2.2.2 丝膜菌提取物的获得过程 | 第31-32页 |
2.2.3 DPPH自由基清除率实验 | 第32页 |
2.2.4 细胞活性检测(MTT比色法) | 第32-33页 |
2.2.5 线粒体膜电势(JC-1) | 第33-35页 |
2.2.6 细胞内ROS检测(DCFH-DA染色法) | 第35-36页 |
2.2.7 蛋白免疫印迹(Western Blot)实验 | 第36-37页 |
2.2.8 Hoechst33342染色 | 第37页 |
2.2.9 流式细胞术(FCW) | 第37-38页 |
2.2.10 丙二醛(MDA)测定试剂盒(TBA法,硫代巴比妥酸法) | 第38-39页 |
2.2.11 超氧化物歧化酶(SOD)试剂盒 | 第39页 |
2.2.12 统计学处理 | 第39-40页 |
2.3 实验流程和思路 | 第40-41页 |
第3章 实验结果 | 第41-58页 |
3.1 丝膜菌提取物抗氧化能力的初步筛选 | 第41-42页 |
3.1.1 提取物自由基清除率检测 | 第41-42页 |
3.2 PC-12 细胞氧化应激损伤模型的建立 | 第42-47页 |
3.2.1 MTT检测H_2O_2作用下PC-12 细胞存活率 | 第42页 |
3.2.2 倒置显微镜观察H_2O_2作用下PC-12 细胞的形态变化 | 第42-44页 |
3.2.3 H_2O_2可诱导PC-12 细胞发生氧化应激 | 第44-47页 |
3.2.3.1 H_2O_2作用下PC-12 细胞内ROS变化情况 | 第44页 |
3.2.3.2 H_2O_2作用下PC-12 细胞线粒体膜电势变化 | 第44-46页 |
3.2.3.3 H_2O_2作用下PC-12 细胞细胞核变化 | 第46-47页 |
3.3 CD对H_2O_2作用下PC-12 细胞的保护作用 | 第47-50页 |
3.3.1 CD可提高H_2O_2作用下的PC-12 细胞存活率 | 第47页 |
3.3.2 CD能够减少H_2O_2作用下PC-12 细胞凋亡数 | 第47-49页 |
3.3.3 CD对H_2O_2作用下PC-12 细胞凋亡蛋白的影响 | 第49-50页 |
3.4 CD对H_2O_2作用下PC-12 细胞氧化应激的影响 | 第50-55页 |
3.4.1 CD可降低H_2O_2诱导PC-12 细胞ROS水平 | 第50-52页 |
3.4.2 流式细胞术检测细胞内ROS水平变化 | 第52-53页 |
3.4.3 细胞SOD活力变化 | 第53-54页 |
3.4.4 细胞脂质过氧化水平变化 | 第54-55页 |
3.5 CD对H_2O_2作用下PC-12 细胞线粒体功能的影响 | 第55-58页 |
3.5.1 CD能够抑制H_2O_2作用下PC-12 细胞的线粒体膜电势的降低 | 第55-58页 |
第4章 讨论 | 第58-61页 |
第5章 结论 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-72页 |
作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第72-73页 |
致谢 | 第73页 |