| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-25页 |
| 1.1 遗传多样性研究的内容 | 第12页 |
| 1.2 遗传多样性研究的方法 | 第12-13页 |
| 1.2.1 形态学标记 | 第12页 |
| 1.2.2 细胞学标记 | 第12-13页 |
| 1.2.3 生化标记 | 第13页 |
| 1.2.4 分子标记 | 第13页 |
| 1.3 分子标记在水产动物中的应用 | 第13-21页 |
| 1.3.1 限制性片段长度多态性(RFLP) | 第13-14页 |
| 1.3.2 随机扩增多态性DNA (RAPD) | 第14页 |
| 1.3.3 扩增片段长度多态性(AFLP) | 第14-20页 |
| 1.3.4 微卫星标记(SSR) | 第20-21页 |
| 1.3.5 单核苷酸多态性(SNP) | 第21页 |
| 1.4 分子系统发育研究 | 第21-23页 |
| 1.4.1 DNA序列分析 | 第22页 |
| 1.4.2 分子系统树 | 第22-23页 |
| 1.5 施氏獭蛤的研究现状及本研究的目的意义 | 第23-25页 |
| 1.5.1 施氏獭蛤的研究现状 | 第23-24页 |
| 1.5.2 本研究的目的与意义 | 第24-25页 |
| 第二章 施氏獭蛤群体形态差异的分析 | 第25-38页 |
| 2.1 材料与方法 | 第25-26页 |
| 2.1.1 材料来源 | 第25-26页 |
| 2.1.2 实验器械及试剂 | 第26页 |
| 2.1.3 方法 | 第26页 |
| 2.2 数据处理 | 第26-29页 |
| 2.2.1 形态差异分析 | 第27-28页 |
| 2.2.2 主成分分析 | 第28页 |
| 2.2.3 聚类分析 | 第28-29页 |
| 2.2.4 判别分析 | 第29页 |
| 2.3 结果 | 第29-35页 |
| 2.3.1 形态分析结果 | 第29-31页 |
| 2.3.2 主成分分析结果 | 第31-32页 |
| 2.3.3 聚类分析结果 | 第32-34页 |
| 2.3.4 判别分析结果 | 第34-35页 |
| 2.4 讨论 | 第35-38页 |
| 2.4.1 形态特征分析 | 第35-36页 |
| 2.4.2 多变量分析 | 第36-38页 |
| 第三章 施氏獭蛤群体遗传多样性的AFLP分析 | 第38-55页 |
| 3.1 材料与方法 | 第38-44页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第38页 |
| 3.1.2 主要仪器设备 | 第38页 |
| 3.1.3 试剂与溶液配制 | 第38-40页 |
| 3.1.4 基因组DNA提取与检测 | 第40-41页 |
| 3.1.5 AFLP分析流程 | 第41-43页 |
| 3.1.6 数据的收集和分析 | 第43-44页 |
| 3.2 结果与分析 | 第44-51页 |
| 3.2.1 基因组DNA的提取 | 第44页 |
| 3.2.2 预扩增产物的检测结果 | 第44-45页 |
| 3.2.3 选择性扩增产物检测 | 第45-46页 |
| 3.2.4 引物对的筛选 | 第46页 |
| 3.2.5 AFLP分析结果 | 第46-51页 |
| 3.3 讨论 | 第51-55页 |
| 3.3.1 施氏獭蛤群体的遗传多样性分析 | 第51-52页 |
| 3.3.2 施氏獭蛤和菲律宾獭蛤的群体遗传结构和遗传分化分析 | 第52-54页 |
| 3.3.3 施氏獭蛤与其它常见贝类遗传多样性比较 | 第54-55页 |
| 第四章 施氏獭蛤群体线粒体16S rRNA基因片段序列分析 | 第55-65页 |
| 4.1 材料与方法 | 第55-56页 |
| 4.1.1 样品采集 | 第55页 |
| 4.1.2 主要仪器设备 | 第55页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第55页 |
| 4.1.4 基因组DNA的提取与检测 | 第55页 |
| 4.1.5 16S rRNA PCR扩增 | 第55-56页 |
| 4.1.6 16S rRNA-PCR产物的琼脂糖凝胶检测 | 第56页 |
| 4.1.7 16SrRNA序列的处理和分析 | 第56页 |
| 4.2 结果与分析 | 第56-63页 |
| 4.2.1 16S rRNA序列的分析 | 第56-57页 |
| 4.2.2 分子系统树 | 第57-63页 |
| 4.3 讨论 | 第63-65页 |
| 第五章 总结 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-73页 |
| 附录 | 第73-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第76页 |
