| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩写与符号 | 第9-10页 |
| 文献综述 | 第10-18页 |
| 1 RNA剪接概述 | 第10-14页 |
| 1.1 RNA剪接的基本元件和化学基础 | 第11页 |
| 1.2 RNA剪接过程 | 第11-12页 |
| 1.3 RNA选择性剪接 | 第12页 |
| 1.4 SR蛋白家族 | 第12-13页 |
| 1.5 黑腹果蝇CAPER蛋白 | 第13页 |
| 1.6 真核生物RNA剪接与基因转录 | 第13-14页 |
| 2 黑腹果蝇中枢神经系统和复眼组织的发育概述 | 第14-18页 |
| 2.1 黑腹果蝇神经系统的细胞类型 | 第14-15页 |
| 2.2 黑腹果蝇神经管的发育 | 第15页 |
| 2.3 黑腹果蝇神经突起的生长 | 第15页 |
| 2.4 黑腹果蝇神经突触的分类 | 第15-16页 |
| 2.5 黑腹果蝇复眼的分化 | 第16页 |
| 2.6 黑腹果蝇小眼的组织分化 | 第16-18页 |
| 1 引言 | 第18-20页 |
| 1.1 研究目的意义 | 第18页 |
| 1.2 研究内容 | 第18页 |
| 1.3 研究内容创新点 | 第18-19页 |
| 1.4 技术路线 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-45页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-22页 |
| 2.1.1 果蝇品系与果蝇细胞品系 | 第20页 |
| 2.1.2 感受态细胞、质粒和试剂盒 | 第20页 |
| 2.1.3 常用试剂及缓冲液 | 第20-21页 |
| 2.1.4 培养基 | 第21页 |
| 2.1.5 主要仪器设备 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-45页 |
| 2.2.1 黑腹果蝇S2细胞内CAPER的shRNA干扰 | 第22-28页 |
| 2.2.2 黑腹果蝇S2细胞内CAPER的dsRNA干扰 | 第28-34页 |
| 2.2.3 检测果蝇S2细胞内CAPER的两种不同RNAi的影响 | 第34-38页 |
| 2.2.4 GAL4/UAS二元表达系统得到RNAi果蝇品系 | 第38-39页 |
| 2.2.5 检测果蝇三龄幼虫和早期蛹的CAPER-RNAi作用 | 第39-43页 |
| 2.2.6 黑腹果蝇幼虫的脑组织、复眼切片以及复眼电镜样品的制作 | 第43-45页 |
| 3 结果与分析 | 第45-55页 |
| 3.1 通过shRNA可降低黑腹果蝇S2细胞内CAPER的表达水平 | 第45页 |
| 3.2 通过shRNA介导CAPER的RNAi可引起其他基因的表达量降低 | 第45-47页 |
| 3.3 通过dsRNA可降低黑腹果蝇S2细胞内CAPER的表达水平 | 第47页 |
| 3.4 通过dsRNA介导CAPER的RNAi可引起部分基因的mRNA表达水平降低并显著改变CG9646的选择性剪接和CG2950的pre-mRNA末端选择 | 第47-48页 |
| 3.5 GAL4/UAS二元表达系统介导的RNAi技术，在黑腹果蝇体内显著降低CAPER的mRNA表达水平并引起黑腹果蝇蛹后期的死亡 | 第48-49页 |
| 3.6 黑腹果蝇体内CAPER的RNAi分别降低激活蛋白1的亚基同源蛋白和雌激素同源受体的相关基因的mRNA表达水平 | 第49-51页 |
| 3.7 神经系统内特异诱导CAPER的RNAi引起黑腹果蝇表型异常 | 第51页 |
| 3.8 黑腹果蝇三龄幼虫脑组织内CAPER的RNAi的绿色荧光 | 第51-53页 |
| 3.9 果蝇眼组织内特异诱导CAPER的RNAi引起果蝇表型异常 | 第53-55页 |
| 4 讨论 | 第55-57页 |
| 5 结论与展望 | 第57-58页 |
| 5.1 主要结论 | 第57页 |
| 5.2 工作展望 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 附录 | 第63-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 个人简介 | 第66页 |
| 在校期间发表论文 | 第66页 |
