| 缩写 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 微藻光合制氢的研究进展 | 第10-30页 |
| 1 概述 | 第11-12页 |
| 2 生物制氢的研究进展 | 第12-22页 |
| 2.1 研究概况 | 第12-13页 |
| 2.2 小球藻生理特征 | 第13页 |
| 2.3 主要限制因子 | 第13-15页 |
| 2.3.1 氧气 | 第13-14页 |
| 2.3.2 电子 | 第14页 |
| 2.3.3 其它影响因子 | 第14-15页 |
| 2.4 提高微藻产氢策略 | 第15-17页 |
| 2.4.1 营养缺陷调控 | 第15页 |
| 2.4.2 亚硫酸氢钠处理法 | 第15-16页 |
| 2.4.3 其它产氢策略 | 第16-17页 |
| 2.5 微藻产氢优化方案 | 第17-20页 |
| 2.5.1 pH优化 | 第17-18页 |
| 2.5.2 光强优化 | 第18页 |
| 2.5.3 细胞聚集法 | 第18-20页 |
| 2.6 CO_2提高微藻PSⅡ活性 | 第20-22页 |
| 2.6.1 CO_2的危害和利用 | 第20-21页 |
| 2.6.2 CO_2提高了微藻PSⅡ活性 | 第21-22页 |
| 3 本研究的内容、目的及意义 | 第22-23页 |
| 3.1 研究内容 | 第22页 |
| 3.2 研究目的及意义 | 第22-23页 |
| 参考文献 | 第23-30页 |
| 第二章 NaHSO_3作用下高CO_2提高小球藻光合产氢的作用机理 | 第30-43页 |
| 1 引言 | 第31-32页 |
| 2 材料与方法 | 第32-35页 |
| 2.1 藻细胞培养 | 第32页 |
| 2.2 样品制备和NaHSO_3处理 | 第32页 |
| 2.3 光合产氢的检测 | 第32-33页 |
| 2.4 叶绿素含量的检测 | 第33页 |
| 2.5 溶解氧的检测 | 第33页 |
| 2.6 氢酶活性分析 | 第33-34页 |
| 2.7 叶绿素荧光的检测 | 第34-35页 |
| 3 结果和讨论 | 第35-40页 |
| 3.1 不同浓度的NaHSO_3处理对小球藻光合产氢的影响 | 第35-36页 |
| 3.2 相同藻细胞密度下,高浓度CO_2培养提高了小球藻的产氢积累量 | 第36-37页 |
| 3.3 相同藻细胞密度下,高浓度CO_2培养提高了小球藻的氢酶活性 | 第37-38页 |
| 3.4 相同藻细胞密度下,NaHSO_3能够有效降低反应体系中的溶解氧 | 第38-39页 |
| 3.5 相同藻细胞密度下,高浓度CO_2能够维持小球藻更高的PSⅡ活性 | 第39-40页 |
| 4 结论 | 第40页 |
| 参考文献 | 第40-43页 |
| 第三章 高CO_2处理提高小球藻的生物量并提高其光合产氢 | 第43-58页 |
| 1 引言 | 第44-45页 |
| 2 材料与方法 | 第45-49页 |
| 2.1 藻细胞培养 | 第45-46页 |
| 2.2 样品制备和NaHSO_3处理 | 第46页 |
| 2.3 生长曲线的检测 | 第46页 |
| 2.4 叶绿素含量的检测 | 第46-47页 |
| 2.5 细胞干重的检测 | 第47页 |
| 2.6 光合产氢的检测 | 第47页 |
| 2.7 溶解氧的检测 | 第47页 |
| 2.8 氢酶活性分析 | 第47-49页 |
| 3 结果和讨论 | 第49-54页 |
| 3.1 相同培养时间和相同藻液体积下,CO_2促进了小球藻的生长 | 第49-50页 |
| 3.2 相同培养时间和相同藻液体积下,CO_2促进小球藻生物量的积累 | 第50-51页 |
| 3.3 NaHSO_3处理下,CO_2优化显著提高了小球藻的光合产氢 | 第51-52页 |
| 3.4 NaHSO_3处理下,生物量的增加不影响NaHSO_3降低小球藻的溶解氧 | 第52-53页 |
| 3.5 NaHSO_3处理下,生物量的增加提高了小球藻的氢酶活性 | 第53-54页 |
| 4 结论 | 第54页 |
| 5 展望 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 附录: 硕士期间发表文章 | 第59-61页 |
| 附件 | 第61页 |
