| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 前言 | 第9-18页 |
| 实验材料 | 第18-22页 |
| 1. 实验动物 | 第18页 |
| 2. 实验仪器 | 第18-19页 |
| 3. 实验试剂 | 第19-20页 |
| 4. 主要溶液的配制 | 第20-22页 |
| 实验方法 | 第22-33页 |
| 1. 血压测量 | 第22页 |
| 1.1 颈动脉插管法检测小鼠动脉血压 | 第22页 |
| 1.2 尾袖法检测大鼠动脉血压 | 第22页 |
| 2. ELISA方法检测外周血血清炎症因子的表达 | 第22-26页 |
| 2.1 小鼠血清炎症因子IL-1β和TNF-α表达的检测 | 第22-25页 |
| 2.2 大鼠血清炎症因子IL-6表达的检测 | 第25-26页 |
| 3. 流式细胞术 | 第26-28页 |
| 3.1 小鼠外周血液中免疫细胞和血小板-白细胞聚集的百分率的检测 | 第26页 |
| 3.2 大鼠外周血液中免疫细胞和血小板-白细胞聚集的百分率的检测 | 第26-27页 |
| 3.3 大鼠主动脉血管炎症细胞浸润的检测 | 第27-28页 |
| 4. 免疫组化方法检测组织的炎症反应状况 | 第28-29页 |
| 4.1 小鼠耳部小血管和肾脏炎症细胞浸润的检测 | 第28页 |
| 4.2 大鼠肾脏炎症细胞浸润的检测 | 第28-29页 |
| 5. 免疫印迹法检测蛋白质表达水平 | 第29-32页 |
| 5.1 小鼠肾脏炎症因子IL-6、IL-1β和TNF-α蛋白表达水平的检测 | 第29页 |
| 5.2 人脐静脉内皮细胞炎症因子IL-1β和NF-κB信号通路蛋白表达水平的检测 | 第29-30页 |
| 5.3 BCA法测定蛋白浓度 | 第30页 |
| 5.4 SDS-PAGE凝胶电泳及Western Blot | 第30-32页 |
| 6. HUVEC细胞粘附因子P-selectin和E-selectin表达的检测 | 第32页 |
| 7. 统计学分析 | 第32-33页 |
| 实验结果 | 第33-55页 |
| 1. PSGL-1敲除小鼠实验 | 第33-43页 |
| 1.1 颈总动脉插管法检测小鼠动脉血压 | 第33-34页 |
| 1.2 PSGL-1的缺失抑制高盐喂养小鼠血液中免疫细胞的百分率 | 第34-36页 |
| 1.3 PSGL-1的缺失抑制小鼠外周血中血小板-白细胞聚集 | 第36-38页 |
| 1.4 PSGL-1的缺失抑制血清炎症因子IL-1β和TNF-α的表达 | 第38-39页 |
| 1.5 PSGL-1的缺失抑制高盐诱导的耳部小血管炎症反应 | 第39-40页 |
| 1.6 PSGL-1的缺失抑制肾脏炎症细胞浸润 | 第40-41页 |
| 1.7 PSGL-1的缺失抑制肾脏炎症因子的表达 | 第41-43页 |
| 2. 盐敏感性高血压大鼠实验 | 第43-51页 |
| 2.1 血小板抑制剂显著降低外周血血小板的数量 | 第43-44页 |
| 2.2 血小板抑制剂降低高盐诱导的Dahl SS大鼠的血压 | 第44页 |
| 2.3 血小板抑制剂降低高盐诱导的Dahl SS大鼠外周血炎症细胞的比例 | 第44-46页 |
| 2.4 血小板抑制剂降低高盐诱导的Dahl SS大鼠外周血中血小板-白细胞聚集 | 第46-47页 |
| 2.5 血小板抑制剂降低高盐诱导Dahl SS大鼠血清炎症因子IL-6的表达 | 第47-48页 |
| 2.6 血小板抑制剂抑制高盐诱导Dahl SS大鼠主动脉血管的炎症细胞浸润 | 第48-50页 |
| 2.7 血小板抑制剂减少高盐诱导的Dahl SS大鼠肾脏炎症细胞浸润 | 第50-51页 |
| 3. 人脐静脉内皮细胞实验 | 第51-55页 |
| 3.1 高盐促进HUVEC表达粘附因子P-selectin和E-selectin | 第51-52页 |
| 3.2 高盐促进HUVEC表达炎症因子IL-1β | 第52-53页 |
| 3.3 高盐活化HUVEC内NF-κB信号通路 | 第53-55页 |
| 讨论 | 第55-60页 |
| 缩略语 | 第60-62页 |
| 参考文献 | 第62-70页 |
| 附件1 | 第70-71页 |
| 附件2 | 第71-73页 |
